$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
取一个含哺乳动物上皮细胞培养物的多孔板。
在检测孔中,加入细菌病原体以及偶联了细菌表面蛋白的聚合物微珠。
在对照孔中,加入缺乏细菌表面蛋白的病原体和珠粒。孵育。
在检测孔中,微珠模拟细菌表面,与病原体竞争结合上皮细胞膜上的磷脂酸,从而减少细菌的黏附。
在对照孔中,微珠不影响细菌的附着。
移除培养基,并用缓冲液洗涤以去除未结合的组分。
使用非离子型去污剂孵育,裂解细胞,释放膜附着的细菌和微珠。
用移液器吹打裂解液以形成均匀的悬浮液,并使用缓冲液对匀浆液进行连续稀释。
将稀释液转移至琼脂平板上,孵育以使菌落形成,并计数菌落。
与对照组相比,测试平板上的菌落数量较少,表明细菌与宿主之间的相互作用减弱。
通过将细菌培养物稀释到无添加剂的无色 DMEM 中来制备感染培养基。
预热至37摄氏度,含有体积分数为10%的微珠悬浮液。为达到10的感染复数(MOI),每孔准备1毫升,并为每个样本额外准备10至20%的过量体积。吸除孔中的旧培养基,通过向每孔加入1毫升预热至37摄氏度的无菌PBS洗涤培养的HeLa细胞。吸除PBS,每孔加入1毫升感染培养基。加入含有对照微珠和细菌的溶液作为阳性对照,以及含有黏附微珠但无细菌的溶液作为阴性对照。
加入含有 0.1% Triton X-100 的 DMEM 作为裂解对照。
将培养板置于37摄氏度的组织培养箱中孵育所需的时间。
在感染后一小时进行细菌黏附的测定。移除细胞层中的培养基,并用无菌预热的 PBS 彻底清洗细胞层,以去除未黏附的细菌。每次使用一毫升 PBS,至少清洗三到四次。通过向每孔加入一毫升无菌的 PBS 中含 1%(体积比)Triton X-100 的溶液来裂解宿主细胞。将培养板在 37°C 下孵育五分钟。
转移各孔中的样品前,先用移液器将每个样品上下吹打数次,然后将内容物转移至不同的1.5毫升离心管中。用无菌PBS对样品进行10倍系列稀释。取每个样品100 µL接种于海洋LB琼脂平板上,使用细胞涂布器均匀涂布。根据细菌菌株和取样时间点优化接种的稀释倍数。
对于该实验设置,10⁵ 或 10⁶ 倍稀释可获得合适的菌落形成单位(CFU)数量。将平板在 37°C 下过夜培养。次日,通过菌落计数法对细菌进行计数。