从细菌中分离和富集外膜来源的细胞外囊泡

0 次观看3:53 分钟 • September 26th, 2025

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首先将基因工程细菌菌落接种到液体培养基中。

这些细菌在外膜(外部保护层)中表达荧光融合蛋白。

孵育细菌以释放细胞外囊泡 (EV),这是参与细胞间通讯的膜结合纳米结构,其中包含荧光蛋白。

将培养物转移到瓶中并低速离心以沉淀细胞。

转移含有EV,细胞蛋白和细胞碎片的上清液。高速离心,除去含有碎屑的上清液。

通过膜过滤上清液,以消除任何残留的细菌和碎屑。

将样品接种在琼脂上并孵育。没有细菌菌落形成证实了细菌的不存在。

将溶液转移到带有半透膜和离心机的超滤装置中,以捕获EV,同时消除较小的蛋白质。

将浓缩的EV收集在试管中进行下游分析。

首先使用无菌环将单个大 肠杆菌 菌落接种到 250 至 1000 毫升 Luria-Bertani 或 LB 肉汤中。然后,将培养物在摇动培养箱中以每分钟 300 转和 37 摄氏度有氧孵育。孵育48小时后,通过将细胞培养物转移到清洁的500毫升聚丙烯离心瓶中,在4摄氏度和5,000倍G的大容量固定角转子中离心15分钟,以澄清细菌培养基。

将上清液转移到干净的离心瓶中,小心地倒入以 10,000 倍 G 离心 15 分钟。接下来,将上清液转移到适当尺寸的0.2微米聚醚砜真空驱动过滤装置中,并将过滤装置连接到真空壁供应。如果过滤率显着下降,请将未过滤的材料移至新设备。

过滤后的培养基可以在 4 摄氏度下储存过夜,也可以立即进一步处理。要检查活细胞是否完全去除,请将过滤后的上清液等分试样铺在合适的琼脂平板上,并确保在细菌菌株的最佳条件下孵育后没有任何菌落。对于浓缩体积为100毫升的过滤培养基,将90毫升过滤后的培养基加载到分子量截止值为100千道尔顿的离心超滤装置的储液器中,并在4摄氏度和2,000倍G的摆斗转子中离心培养基,间隔15至30分钟,直到顶部储液器中的培养基体积浓缩到0.5毫升以下。

要用任何剩余的过滤培养基加满储液器,请移除设备底部的流通口以重新平衡。如果储液器中浓缩培养基的粘度明显增加,则用PBS稀释培养基并通过离心重新浓缩,以减少小于100千道尔顿的分子量截止值的任何非细胞外囊泡或EV蛋白。然后,将浓缩培养基转移到低蛋白结合管中,在 4 摄氏度下储存过夜。

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最后更新:1 八月 2026