0 次观看 • 3:53 分钟 • September 26th, 2025
首先将一株基因工程改造的细菌菌落接种到液体培养基中。
这些细菌在外膜(一种外部保护层)中表达一种荧光融合蛋白。
孵育细菌以释放细胞外囊泡(EVs),即参与细胞间通讯的膜结合纳米结构,其中包含荧光蛋白。
将培养物转移至离心管中,低速离心以沉淀细胞。
转移含有细胞外囊泡(EVs)、细胞蛋白和细胞碎片的上清液。高速离心后,弃去含有碎片的上清液。
通过膜过滤上清液,以去除任何残留的细菌和碎片。
在琼脂培养基上接种样品并进行培养。若无细菌菌落形成,则证实样品中无细菌存在。
将溶液转移至带有半透膜的超滤装置中,离心以截留细胞外囊泡(EVs),同时去除较小的蛋白质。
将浓缩的EVs收集到离心管中,用于后续分析。
首先,用无菌接种环将单个 Escherichia coli 菌落接种至 250 至 1000 毫升的 Luria-Bertani(LB)液体培养基中。然后,在 300 转/分钟、37 °C 条件下,将培养物于摇床培养箱中进行好氧培养。培养 48 小时后,将菌液转移至洁净的 500 毫升聚丙烯离心管中,于 4 °C、5,000 ×g 条件下,使用大容量固定角转子离心机离心 15 分钟,以澄清细菌培养液。
将上清液小心倾倒入干净的离心管中,于10,000 × g 离心15分钟。随后,将上清液转移至适当大小的0.2微米聚醚砜真空驱动滤器装置,并将过滤装置连接至真空壁式供气系统。若过滤速率显著下降,需将未过滤的样品转移至新的过滤装置中。
过滤后的培养基可在4°C下保存过夜,也可立即进行后续处理。为检测活细胞是否完全去除,取一份过滤后的上清液涂布于合适的琼脂平板上,在该细菌菌株最适培养条件下孵育后,确认无任何菌落生长。对于体积为100毫升的过滤培养基,将其90毫升加入截留分子量为100千道尔顿的离心超滤装置的储液室中,在4°C条件下,使用水平转子以2,000 × g离心15至30分钟为一个间隔,重复操作直至上层储液室中的培养基体积浓缩至小于0.5毫升。
将剩余的过滤培养基加入储液池以补充液量,并移除装置底部的流穿液以重新平衡。如果储液池中浓缩培养基的黏度明显增加,可用 PBS 稀释培养基,再通过离心重新浓缩,以去除分子量截断值低于 100 千道尔顿的非细胞外囊泡(EV)蛋白质。然后,将浓缩后的培养基转移至低蛋白结合管中,在 4 摄氏度下过夜保存。
本文介绍了一种从表达荧光融合蛋白的基因工程细菌中分离细胞外囊泡(EVs)的方法。该过程包括多个离心和过滤步骤,以确保去除活细胞并浓缩EVs,用于后续分析。
分离细菌胞外囊泡(EVs)可为早期发现阶段提供可扩展的膜源性纳米颗粒来源,用于靶点验证和表型筛选,从而实现机制层面的风险降低。该方法通过标准化、可重复的EV富集,支持检测方法的开发,减少下游功能分析中的变异性。这使得该技术成为一种转化工具,可用于更可靠地评估细菌来源的治疗剂或疫苗候选物。
该方法适用于从早期靶点验证到先导物鉴定的整个发现流程,在此过程中,细菌EV可作为机制探针或递送载体。通过提供经纯化且可定量的EV组分以实现功能检测,该方法能够支持筛选工作流程。该流程还支持对富集后的EV进行荧光或生化检测,从而促进不同条件间的比较分析。该方案具有可扩展性和在不同细菌菌株间的标准化特性,有利于企业级的重复使用。
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最后更新:29 八月 2026