在恒定培养基流量下评估肺炎球菌与原代人内皮细胞的附着

0 次观看3:20 分钟 • September 26th, 2025

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将连接到微流体泵的明胶涂层通道载玻片放在显微镜载物台上。

载玻片包含在流动培养基下培养的原代人内皮细胞,细胞表面有血管性血友病因子或 VWF(一种糖蛋白)串。

这些字符串是通过用组胺刺激细胞而产生的。

通过微流体泵施加受控介质流量,促进 VWF 分泌和展开。这会公开 VWF 字符串上的特定绑定域。

停止培养基流动,添加绿色荧光团偶联的 VWF 特异性抗体,然后恢复流动以用抗体标记字符串。

暂停培养基流动并引入表达红色荧光蛋白的肺炎球菌。

重新启动流动以分布细菌,从而能够通过表面粘附素附着在暴露的结构域上。

使用荧光显微镜,可视化细菌与琴弦的实时结合。

停止培养基流动并获取 Z 堆栈图像以量化细菌附着在内皮细胞上。

为了进行显微可视化,请将流体装置放入 37 摄氏度的加热室中。将通道载玻片放在预热显微镜的载物台上。

在将组胺和细菌注射到流动循环之前控制细胞形态和 HUVEC 层的完整性。保持流量设置。通过注射口将136微升100毫摩尔组胺储备溶液注射到灌注管中循环的ECGMS培养基中,诱导VWF从内皮活Palade体中释放。

对于多聚化VWF串的免疫荧光检测,将20微克VWF特异性FITC偶联抗体以200微升PBS的体积注射到循环的13.6毫升ECGMS培养基中。为了量化肺炎球菌与HUVEC细胞表面产生的VWF串的附着,使用注射口将1.35乘10的每毫升RFP向第八个CFU注射到表达肺炎球菌的最大体积为1毫升的ECGMS培养基中。选择63倍油浸物镜进行显微镜放大,并将显微镜软件中的荧光滤光片设置调整为RFP通道,并带有540纳米检测滤光片,用于检测表达RFP的肺炎球菌。

为了量化细菌附着在VWF字符串上,请创建至少30个代表性现场视图的Z堆栈快照,每个视图包含大约10个形态上完整的HUVEC,并计算肺炎球菌的数量。

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最后更新:1 八月 2026