0 次观看 • 3:55 分钟 • September 26th, 2025
从支持细菌生长的熔融琼脂培养基开始。
加入铁螯合剂以耗尽游离铁,并在培养基中补充钙。
将培养基倒入培养皿中,待其凝固后,干燥以去除残留水分。
取一管副溶血性弧菌(Vibrio parahaemolyticus)的液体培养物,该菌为具有鞭毛的细菌。
在液体培养基中,细菌以短杆状、具有一根鞭毛的游动形态存在。
将菌液点在平板上,待其干燥,以促进细菌与表面的接触。
密封培养皿并进行孵育,使细菌的挥发性代谢副产物得以积累。
表面接触、铁限制、钙的可利用性以及代谢副产物的积累会诱导基因表达,从而触发细胞分化为细长的游动细胞,这些细胞具有侧生鞭毛,能够在固体表面移动。
游动细胞向外扩展,形成由完全分化细胞组成的群游光晕,表明分化成功。
制备用于泳动实验的琼脂溶液时,将四克心浸粉(H. I. 琼脂粉末)与100毫升双蒸水混合悬浮。
将H. I. 琼脂溶液放入微波炉中仔细煮沸,期间不时摇动瓶子,直至粉末完全溶解。将琼脂溶液在121摄氏度下高压灭菌20分钟,然后在持续搅拌下冷却至60至65摄氏度。下一步操作涉及使用剧毒物质2,2'-联吡啶,因此必须佩戴手套和安全护目镜。
加入2,2'-联吡啶,使其终浓度为50 µM。加入氯化钙,使其终浓度为4 mM。从单个菌落边缘接种少量副溶血性弧菌(V. parahaemolyticus)细胞至5 mL LB肉汤中。
将培养物置于37摄氏度的摇床培养箱中孵育,直至其在600纳米处的光密度达到0.8。这通常需要大约两到三个小时。在细胞培养生长的同时,用移液器将30至35毫升的终末H. I. 琼脂溶液加入一个圆形150毫米的培养皿中,并让琼脂凝固。
在点样细胞培养物之前,将琼脂平板倒置,打开皿盖,在37摄氏度下干燥至少10分钟,或直至液体残留物完全消失,但不可过度干燥。取1 µL细胞培养物,点于H. I. 琼脂群游平板的中央,待其自然干燥。用透明塑料胶带密封平板,注意避免胶带上产生气泡或褶皱。
将培养皿在24摄氏度下孵育过夜。这将导致形成具有从菌落中心向外延伸的游走晕(swarm flares)的 V. parahaemolyticus 游走菌落,如本延时视频片段所示。
本研究探讨了副溶血性弧菌在特定环境条件下分化为游走细胞的过程。该过程涉及调整琼脂培养基成分和培养条件,以促进细菌的生长与运动。
诱导副溶血性弧菌(Vibrio parahaemolyticus)分化为游动细胞,可精确研究细菌适应性与运动机制,这对于理解微生物在疾病相关系统中的行为至关重要。该实验流程可支持抗毒力和抗生物膜策略在感染性疾病项目中的早期靶点验证及作用机制去风险化。该方法为评估环境诱导因素及细菌表型相关的基因表达变化提供了可重复的实验平台。
该方法可融入传染病研究从早期假设验证到检测方法开发及临床前模型构建的整个发现过程。
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最后更新:22 八月 2026