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从一个装有预热营养培养基的微流控板开始。
将培养板连接至流道系统并密封装置。驱动培养基流经通道,以去除任何气泡。
将装置置于显微镜载物台上,并进行预热以防止成像过程中培养板膨胀。
接下来,移除培养基,将细菌培养物加入细胞入口,将诱导应激的培养基加入溶液入口。
用于诱导应激的培养基含有某种抗生素,该抗生素可抑制细胞分裂,但不会抑制细胞质量的增加。
封闭系统,然后启动细胞加样,将细菌转移至培养板的培养腔中。
使用透射光,找到一个含有均匀分布的单个细胞的视野。
注入诱导应激的培养基,使细胞暴露于抗生素中。
使用相差模式拍摄延时图像,以观察由抗生素介导的细胞分裂抑制所导致的、DNA 含量增加的细长丝状细胞的形成。
首先,按照微流控软件用户指南中的说明,从微流控板中移除保存液,并替换为预热至 37 摄氏度的新鲜培养基。将微流控板连接至管路系统。
在微流控软件中,单击“Seal”按钮,将微流控板与管路系统密封。之后,单击“Priming”按钮。将带有管路系统的微流控板放置在显微镜载物台上,并在37摄氏度下预热两小时,以避免微流控腔室发生扩张。
单击“封合”按钮,将微流控板在微流控系统上密封。用150微升培养样品替换第八孔中的培养基,并用所需的培养基(含或不含诱导应激的试剂)替换第一至第五孔中的培养基。密封微流控板并将其放置在显微镜载物台上。
在微流控软件中运行细胞加载程序。通过透射光显微镜观察,检查细胞加载情况是否满意。在透射光模式下仔细调焦,选择若干视野,确保其中含有分散的细菌且不拥挤,每100平方微米约有10至20个细胞。
在微流控软件中,单击“运行自定义序列”按钮,然后编程注入诱导应激的培养基,先在 2 PSI 条件下持续注入 10 分钟,随后在 1 PSI 条件下继续注入所需应激处理时长。以每 10 分钟采集一帧的频率,采用延时成像模式进行显微镜成像;如需检测 mCherry 信号,使用透射光下的相差成像及 560 纳米激发光源。同时启动显微图像采集和微流控注入程序。