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从装有预热营养培养基的微流控板开始。
将板连接到歧管系统并密封设置。驱动介质通过通道以去除任何气泡。
将装置放在显微镜载物台上并预热,以防止成像过程中板膨胀。
接下来,取出培养基,将细菌培养物引入细胞入口,将应激诱导培养基引入溶液入口。
应激诱导培养基含有一种抗生素,可停止细胞分裂而不抑制细胞质量的增加。
密封系统,然后启动细胞加载以将细菌转移到板的培养室中。
使用透射光,定位包含均匀分布的单细胞的视场。
向腔室注射应激诱导培养基,使细胞暴露于抗生素中。
使用相差模式,捕获延时图像,观察因抗生素介导的细胞分裂抑制而导致的细长丝状细胞的形成,其中 DNA 含量增加。
首先,从微流控板中取出保存溶液,并按照微流控软件用户指南中的说明,用预热至 37 摄氏度的新鲜培养基替换。将微流控板连接到歧管系统。
在微流控软件中,单击“密封”按钮将板密封到歧管系统。之后,单击“启动”按钮。将带有歧管系统的微流控板放置在显微镜载物台上,并在37摄氏度下预热两小时,以避免微流控室扩张。
通过单击“密封关闭”按钮密封微流控系统上的微流体板。用 150 微升培养样品替换 8 孔的培养基,用所需的培养基替换 1 至 5 孔的培养基,无论是否使用应激诱导试剂。密封微流控板并将其放在显微镜载物台上。
在微流控软件中,运行细胞加载程序。通过在透射光下观察显微镜下检查细胞的负载是否令人满意。在透射光模式下仔细聚焦,并选择几个显示分离细菌且不会过度拥挤的视野,每 100 平方微升约 10 至 20 个细胞。
在微流体软件中,单击“运行自定义序列”按钮,然后在 2 PSI 下在 10 分钟内对应激诱导介质的进样进行编程,然后在 1 PSI 下进样所需的应激处理持续时间。在延时模式下进行显微镜成像,每 10 分钟一帧,如果需要,使用透射光中的相差和 560 纳米激发光源来获取 mCherry 信号。同时启动显微图像采集和微流体注入方案。