0 次观看 • 4:28 分钟 • October 30th, 2025
取一培养物 Streptococcus mutans 表达带有聚组氨酸标签并分泌到培养基中的蛋白质。
离心培养物并收集富含蛋白质的上清液。
加入硫酸铵,搅拌孵育,通过降低蛋白质的溶解度使其沉淀。
将溶液转移至离心管中,离心后弃去上清液。
用含有盐和低浓度咪唑的结合缓冲液重悬沉淀,以稳定蛋白质。
用新鲜的结合缓冲液透析溶液,以去除过量的盐。
离心透析后的溶液以沉淀不溶性杂质,然后过滤上清液。
将滤液与负载镍离子的亲和树脂混合,孵育以使带有多聚组氨酸标签的蛋白质选择性结合到镍离子上。
将混合物上样至层析柱,并用结合缓冲液洗涤以去除未结合的蛋白质。
接下来,加入含有高浓度咪唑的洗脱缓冲液,以置换组氨酸与镍离子的结合,从而释放带有聚组氨酸标签的蛋白质。
收集含有纯化蛋白质的洗脱液。
在4°C条件下,以10,000 × g离心细菌培养悬浮液20分钟。
将培养上清液转移至一个三升的玻璃烧杯中。为浓缩培养上清液中的蛋白质,将两升上清液置于磁力搅拌器上,开始剧烈搅拌。加入1,122克硫酸铵,在4°C下剧烈搅拌4小时或过夜,使沉淀形成。
接下来,在 4°C 条件下,以 15,000 × g 离心硫酸铵沉淀溶液 20 分钟。倾去上清液。用刮勺收集沉淀物,并转移至一个 200 毫升的玻璃烧杯中。
将沉淀重悬于35毫升结合缓冲液中。然后,将每份约25毫升的悬液转移至再生纤维素透析管中。将透析管置于2.5升4°C的搅拌结合缓冲液中,在搅拌器上透析悬液。
两小时后更换透析液,并继续透析过夜。接着,将透析后的悬液从透析管转移至离心管中,于4°C、20,000 × g 离心10分钟。使用抽滤装置,将上清液倒入0.2微米孔径的膜滤器中进行过滤。
将滤液转移至75毫升的烧瓶中。
为了从滤过的悬浮液中分离带有聚组氨酸标签的 gtfSI,首先准备固定化金属亲和层析柱。按照手稿中的说明平衡树脂后,关闭霍夫曼夹。
将5毫升过滤后的悬浮液加入柱中,制成浆液。然后,将全部浆液转移至剩余的过滤后悬浮液中,在4摄氏度下轻轻摇动混合物30分钟。将混合液重新加载到柱中。
打开霍夫曼夹管,通过重力流去除悬浮液。用 20 毫升结合缓冲液洗涤 IMAC 树脂,然后加入 20 毫升洗脱缓冲液以获得重组 gtfSI。
本文介绍了一种从变形链球菌(Streptococcus mutans)培养物中纯化带有多聚组氨酸标签蛋白的详细方案。该过程包括硫酸铵沉淀、透析以及固定化金属亲和层析(IMAC),以获得高纯度的目标蛋白。
本方案可实现对细菌上清液中分泌的带有多聚组氨酸标签的蛋白质进行可靠的纯化,有助于抗菌发现中的靶点验证。该方法提供了一种可扩展的途径,用于获得高纯度蛋白质,适用于与变形链球菌毒力因子相关的功能和结构研究。通过为下游检测方法开发提供可重复的蛋白质产量,该方法有助于实现机制层面的风险降低。
该方法通过提供用于生化表征的纯化蛋白,契合从靶点识别到先导化合物优化的整个发现流程。
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最后更新:29 八月 2026