微流控延时显微镜研究抗生素在细菌中的持久性

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从表达荧光标记的 DNA 结合融合蛋白的指数生长的细菌细胞开始,以可视化类核。

将细胞添加到预先制备的微流体板的细胞入口中。

接下来,将含抗生素的培养基和不含抗生素的培养基引入单独的溶液入口。

密封板,将其安装到显微镜载物台上,然后启动延时成像。

首先,将细胞加载到培养室中。

然后,将不含抗生素的培养基灌注到腔室中,以支持指数级细胞生长。

最后,介绍含抗生素的培养基。

抗生素诱导双链 DNA 断裂,杀死易感细胞。这些细胞表现出具有稳定荧光的致密、非复制的类核。

切换回不含抗生素的培养基以促进康复。

持久性细胞——一个在抗生素治疗中存活下来的小亚群——恢复 DNA 复制、延伸和分裂。

这种恢复导致持久性细胞的荧光增加,从而能够在视觉上将它们与易感细胞区分开来。

从微流控板的每个孔中取出保存溶液,并用新鲜培养基代替。通过单击“密封”按钮或通过微流控软件将微流控板与歧管系统密封。

接下来,在微流控软件界面上,通过单击运行液体启动序列来执行第一个启动序列。在开始显微镜成像之前,将板在37摄氏度的显微镜恒温控制柜中孵育至少两个小时。然后在开始实验之前开始第二个运行液体启动序列。

通过单击微流控软件界面上的“解封板”来密封微流控板。用200微升新鲜培养基,含有抗生素的新鲜培养基和新鲜培养基中的0.01 OD稀释培养样品替换孔中的培养基。如前所述密封微流控板后,将板放在显微镜柜内的显微镜物镜上。

在微流控软件中,单击“运行细胞加载序列”以允许将细胞加载到微流控板中。使用透射光模式设置最佳焦点,并选择几个感兴趣区域,其中可以观察到每个区域多达 300 个细胞的适当细胞数。在微流体软件上,编辑“运行自定义序列”,以编程将新鲜培养基以 6.9 千帕的速度注射到 1 号孔和 2 孔 6 小时,然后以 6.9 千帕的浓度将含有抗生素的培养基注射到 3 号孔 6 小时,最后将新鲜培养基以 6.9 千帕的速率注射到 4 号孔和 5 孔 24 小时。

使用透射光和荧光报告基因的激发光源,以延时模式每15分钟一帧进行显微镜成像,并启动微流控程序。在计算机上打开ImageJ或Fiji软件,将超堆栈延时显微镜图像拖到Fiji加载栏中。使用“图像”,然后使用“颜色”,然后使用“合成”来融合超堆栈的不同通道。

使用图像、颜色,如果通道与所需颜色不对应,请使用排列通道。打开MicrobeJ插件,使用手动编辑界面检测细菌细胞。删除自动检测到的单元格,并逐帧手动勾勒出感兴趣的持久化单元格。

检测后,使用MicrobeJ手动编辑界面中的Result图标生成ResultJ表。使用 ResultJ 表深入了解单细胞分析的不同相关参数,并保存 ResultJ 文件。

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Last updated: 18 July 2026