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取一株表达膜结合肽酶 NisP 的Lactococcus lactis菌种。
将培养物与富含营养的培养基混合。
加入熔化的琼脂,混匀,并倒入培养皿中,使L. lactis在琼脂中均匀分布。
凝固后,用打孔器在琼脂中打孔。
接下来,取表达天然型或修饰型抗菌肽乳酸链球菌肽前体变体的重组 E. coli。
离心以沉淀细菌,弃去上清液,并将沉淀物重悬于缓冲液中。
超声处理以裂解细菌,离心,然后将上清液转移至新的离心管中。
使用缓冲液将裂解物调整至相同的光密度,以确保肽段水平一致。
用移液器将每个样品加入单独的琼脂孔中,并孵育样品。
孵育过程中,乳链菌肽前体肽扩散进入琼脂,并被 NisP 切割,从而生成成熟的乳链菌肽。
成熟型尼生素抑制 L. lactis 生长,在孔周围形成清晰的晕圈。
通过比较抑菌圈大小来评估乳酸链球菌素变体的抗菌活性。
将1毫升Lactococcus lactis预培养液加入含10微克/毫升氯霉素和2%葡萄糖的25毫升2X M17肉汤中。然后加入25毫升温热的熔融琼脂,混匀后倒入一个大型培养皿中。在保持无菌条件下,干燥培养皿10至15分钟。
然后,用火焰灼烧玻璃巴斯德移液管的末端进行灭菌。待移液管冷却后,用其较宽的一端在凝固的琼脂中打孔。在培养皿底部靠近相应孔位的位置,为每个样品做好标记。
进行活性测定实验时,取1毫升大肠杆菌(E.coli)生产培养物样品,以7,000 × g离心3分钟。吸除上清培养基,将菌体沉淀用移液器加入500 µL磷酸钠缓冲液重悬。
接下来,将超声波破碎仪的探针浸入细胞悬液中,在冰上进行超声处理。启动超声。然后,以13,000 × g离心细胞裂解液10分钟,以沉淀细胞碎片。
将上清液转移至冰上的新反应管中。用磷酸钠缓冲液将上清液稀释并归一化至1毫升,使OD600值相对于收获的细胞密度达到0.6,并混匀。为检测抗菌活性,取40微升归一化后的样品加入指示琼脂板上指定的孔中。
等待所有样品完全扩散至琼脂中。将培养皿于 30 摄氏度下孵育过夜。次日,使用平板扫描仪或数码相机拍摄琼脂平板图像。
可通过手工或使用软件测量生长抑制晕圈的大小。