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取一株含有GFP诱导基因和分泌信号标签化荧光素酶突变体基因的Mycobacterium smegmatis培养物。
该突变基因编码一种无活性的荧光素酶,但在蛋白质合成过程中由于自然的翻译错误而产生有活性的酶。
GFP 用作内参对照,以标准化荧光素酶的表达水平。
加入诱导剂以启动基因表达,然后将培养物分装至多孔板中。
向选定的孔中加入浓度逐渐增加的待测分子。孵育。
在对照条件下,错译会导致荧光素酶的分泌具有活性。
如果测试分子抑制错译,则荧光素酶的活性分泌减少。
将培养物等分试样转移至黑色培养板,检测GFP荧光。
离心以沉淀细胞。
转移含有分泌型荧光素酶的上清液,并加入底物,其中具有活性的荧光素酶催化底物氧化,产生发光信号。
检测发光强度并计算荧光素酶/GFP 比值;比值越低,表明测试分子减少了翻译错误。
首先,用细菌报告菌株接种2毫升7H9培养基。
在37摄氏度下振荡培养一至两天,或直至600纳米处的光密度(OD)达到稳定期。
然后,在50毫升7H9培养基中进行传代培养,直至在600纳米处的OD值达到稳定期末期。在将细菌分装至96孔板之前,加入ATC至终浓度为50纳克/毫升,并充分混匀。
向透明圆底96孔板的每个孔中加入100 µL。接着,向选定的孔中加入不同剂量的Ksg,以筛选其对错译率的影响。向孔板边缘的孔中加入200 µL无菌水,以减少样品孔中液体的蒸发。
密封培养板,振荡混匀,并在37摄氏度下诱导样品16至20小时。使用多通道移液器从每个孔中吸取80微升样品,转移至黑色底面的96孔板中,用发光计测定GFP信号。
测量GFP信号后,在3,220 × g条件下离心微孔板10分钟。然后,将50 µL上清液转移至白色底板的96孔板中。
然后,向每个孔中加入 50 µL 的 Nluc 底物,充分混匀,并用发光检测仪测定发光值。最后,将校正后的 Nluc 发光值除以 GFP 荧光值,计算 Nluc/GFP 比值。