一种用于重组细菌蛋白纯化的亲和色谱技术

0 次观看2:54 分钟 • November 28th, 2025

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取一块表达多组氨酸标记靶蛋白的细菌细胞悬浮液。

冰上超声处理以减少蛋白质降解。高频声波溶解细胞,释放细胞内内容物,包括目标蛋白。

离心机分离杂物,并将含上清液的蛋白质转移到注射器中。

过滤上清液以去除聚集物,防止色谱柱堵塞。

取一个镍基亲和色谱柱并平衡其蛋白纯化。

将过滤液装到柱上。聚组氨酸标签与柱树脂上的镍离子结合,使目标蛋白固定。

用缓冲液清洗柱体以去除未结合蛋白,并监测洗脱液的紫外线吸收率,以确认其去除了非靶向蛋白。

加入含有咪唑的洗脱缓冲液,该缓冲液与聚组氨酸标签竞争镍结合,释放蛋白质。

紫外吸收率的第二次峰值确认了目标蛋白的洗脱,准备用于下游使用。

用五个循环,每次15秒脉冲,30秒暂停,对冰上细胞进行超声处理。

在21,000 、4摄氏度离心后,利用无菌注射器过滤系统过滤上清液。使用配备5毫升镍基亲和柱的自动纯化系统,从无菌过滤的大 肠杆 上清液中净化HIS标记的RTA分数。一般来说,采用每分钟一毫升的洗脱速度,并冷却整个净化系统,以防止毒素结合效率低下和毒素活性流失。

用20毫升结合缓冲液短暂平衡亲和柱以去除储存缓冲液。然后,用注射器将无菌过滤的上清液滴入亲和柱上。用25至35毫升结合缓冲液清洗柱体,去除柱内未结合的蛋白质。

执行洗涤步骤,直到280纳米的紫外线吸收接近初始紫外线值。然后用20至35毫升的洗脱缓冲液洗脱结合的RTA分数,并将样品冰藏保存。重要的是,在UV 280值升高后不久开始RTA分数抽样,并在恢复到原始基线时停止。

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最后更新:1 八月 2026