基因改造细菌细胞中靶酶表达的检测

0 views • 3:01 min • November 28th, 2025

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从装有转基因细菌细胞的管子开始。每种细菌携带高拷贝的化粒,编码各种酶。

通过摇晃培养管,促进多种细胞内酶的表达。

将针对靶酶的底物加入试管,并在对照管中加入等量缓冲液。

用摇晃来孵化。底物进入细胞,目标酶将其切割,产生荧光产物。

将控制管装入预校准的流式细胞仪。

当每个细胞通过激光束时,会散射光线。生成散射图以识别单个单元,这些单元散射的光比团块少。

排除细胞团块,绘制单个细胞的荧光信号图以确定基线荧光。

将底物处理管放入流式细胞仪中,测量荧光信号。

底物处理细胞的荧光信号较对照细胞增加,确认了靶酶表达。

为筛选目标宏基因组酶,需在37摄氏度、200转/分钟下培养分选细胞,直到OD600 达到0.5。然后加入1微升拷贝诱导液,以增强细胞内蓆的拷贝数。

在37摄氏度、250转/分钟下三小时后,将0.5毫升细胞与相应底物结合于14毫升圆底管中,最终浓度为100微摩尔。然后将对照和实验样本在37摄氏度、200转/分钟下孵育三小时。

样品摇晃时,设置FACS机器参数,如前所述。然后,将每个样品中的5微升细胞加入单个5毫升圆底管中,内含1毫升PBS。接着加载采样单元,并将事件率设置为每秒1000到3000事件。

创建对数尺度的前向散射区与对数尺度侧散射面积散射图,并调整R1散射门以涵盖单重态事件细菌细胞。然后创建对数尺度的前向散射与对数尺度FITC面积散射图,并设置R2排序门,使得检测到的负格少于0.1%。现在,加载样本管,并根据需要将事件率调整到每秒1000到3000次。

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Last updated: 18 July 2026