0 次观看 • 3:22 分钟 • January 30th, 2026
取表面抗原结合有IgM抗体的IgM调理绵羊红细胞(SRBCs)。
加入含有除 C5 以外的补体蛋白的血清。
C1复合物结合抗体并被激活。
活化的C1裂解C4和C2,形成C3转化酶,后者进一步裂解C3,并将C3b沉积在SRBC上。
在缺乏 C5 的情况下,C3b 会降解为 C3bi。
将SRBCs加入巨噬细胞培养物中。
C3bi 与巨噬细胞受体结合,触发 SRBC 的吞噬作用。
加入低渗溶液以裂解并去除未内化的SRBCs。
加入裂解缓冲液以裂解细胞并释放SRBC血红蛋白。
加入检测试剂。
在尿素存在下,血红蛋白催化联苯胺荧光素与过氧化氢的氧化反应,生成有色产物。
测定有色产物的吸光度,其值与被吞噬的SRBCs成正比。
该实验利用经调理的SRBC模拟带有抗体标记的细菌靶标,以建立抗体标记细菌的吞噬作用模型。
进行调理作用检测时,在室温下将2 × 10⁸个绵羊红细胞(SRBCs)与50 µL兔抗SRBC免疫球蛋白M(IgM)孵育30分钟。
然后将调理过的SRBCs与50 µL C5缺陷型人血清在37°C下孵育30分钟,以使C3b和C3b抑制性补体片段结合到IgM包被的SRBCs上。
接下来,吸去培养基,向每孔含有 1 × 10⁴ 个过夜培养的小鼠巨噬细胞的 96 孔板中,每孔加入 100 微升含 1 × 10⁷ 个经调理的 SRBCs/毫升培养基的悬液。
将SRBC与小鼠巨噬细胞共培养物在37摄氏度孵育1小时,然后用100微升氯化铵-钾裂解缓冲液洗涤1分钟,以去除未结合的SRBC。
去除未结合的SRBCs后,用100 µL培养基冲洗。用0.1%十二烷基硫酸钠裂解剩余细胞,并将裂解物与50 µL含3%过氧化氢和6 mol/L尿素的2,7-二氨基芴溶液进行处理。
然后在分光光度计上于 620 纳米处测定血红蛋白催化生成荧光蓝的吸光度。
利用已知数量的SRBCs在620纳米波长处的吸光度值绘制标准曲线,以确定被吞噬的调理化SRBCs的数量。
本文介绍了一种评估巨噬细胞吞噬经抗体调理的绵羊红细胞(SRBCs)的方法。该实验利用补体蛋白促进SRBCs与巨噬细胞的结合,并通过检测血红蛋白来定量吞噬作用。
该检测提供了一种定量且可重复的方法,用于模拟补体介导的吞噬作用,从而在早期免疫治疗靶点验证中实现对抗体依赖性细胞吞噬作用(ADCP)的机制性风险评估。通过使用经调理的绵羊红细胞作为抗体标记病原体的替代物,该方法可提高对Fc工程化生物药和免疫调节剂筛选的预测可信度。基于血红蛋白的检测读数为聚焦于先天免疫的发现项目中的苗头化合物到先导化合物的优化进程提供了可扩展且适用于微孔板的输出结果。
该检测适用于从靶点假设验证到先导化合物优化的整个发现过程,尤其适用于靶向吞噬通路的免疫调节剂。在推进至复杂的共培养或体内药效模型之前,该方法可实现对功能活性的早期评估。
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
最后更新:22 八月 2026