0 次观看 • 3:38 分钟 • February 26th, 2026
取一块微孔板,其中包含对照孔和处理孔,每孔接种有可形成生物膜的致病性细菌。
处理孔中含有可破坏生物膜形成的酶。
在微厌氧条件下孵育,以建立低氧环境。这会促进细菌分泌介导表面黏附的信号分子。在处理孔中,酶可降解这些分子,从而减少细菌的黏附。
洗涤各孔以去除未贴壁的细胞。
加入新鲜培养基并进行培养。黏附的细菌增殖并分泌胞外聚合物,从而形成生物膜基质。
移除培养基并洗涤孔板。
加入阳离子染料并孵育,使染料与带负电荷的生物膜组分结合。
洗涤以去除未结合的染料。
在搅拌条件下,用溶剂孵育以将结合的染料释放到溶液中。
通过测量光密度(OD)来定量生物膜生物量。
处理孔中较低的 OD 值反映了生物膜形成减少,这是由于初始细胞黏附能力受损所致。
首先,在摇床培养箱中,于30摄氏度下将5毫升的鲍曼不动杆菌S1菌液在LB培养基中培养16小时。
将菌液浓度调整至 OD600 为 0.8。然后用含有每毫升 4 毫克纯化 GKL 酶的新鲜 LB 培养基将菌液按 1:100 的比例稀释,并向 96 孔板的各孔中加入 100 微升。
用盖子盖住培养板,并将其放入一个10升的塑料容器中。密封容器后,在30摄氏度下孵育3小时,然后轻轻移除培养基。向孔中再加入100微升新鲜LB培养基,并将培养板在30摄氏度下继续孵育21小时。
轻轻移除培养基后,用 200 微升无菌水轻柔冲洗浮游细菌细胞。将移液枪枪头置于孔底部,小心吸出液体培养基,以尽量减少对气液界面处生物膜的干扰。然后向每孔中加入 100 微升 1% 结晶紫溶液,在室温下孵育 15 分钟。
用200微升无菌水洗涤各孔三次,以去除结晶紫溶液。每孔加入100微升33%乙酸,轻轻振荡孵育15分钟,使染料溶解。通过测定结晶紫在600纳米处的吸光度来定量生物膜的量。结晶紫的量与形成的生物膜量成正比。
本研究探讨了一种酶对致病菌生物膜形成的影响。该酶通过降解细菌信号分子来破坏生物膜的形成,从而减少细菌的黏附与增殖。
酶诱导的生物膜抑制的定量评估通过直接测量细菌黏附和基质形成,解决了抗毒力药物发现中的一个关键挑战。该工作流程为目标验证提供了可预测的可信度,并支持传染病研发早期阶段的项目筛选。对生物膜破坏的可靠量化有助于机制层面的风险评估及抗生物膜策略的优先排序。
该方法可整合到抗感染药物研发从早期发现到先导物鉴别的连续流程中,架起靶点验证、检测方法开发与转化研究之间的桥梁。
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最后更新:22 八月 2026