0 次观看 • 4:21 分钟 • March 31st, 2026
取一只固定好的小鼠,用酒精清洁其尾巴,以减少注射部位的污染并扩张静脉。
将致病菌Listeria monocytogenes注入尾静脉,使其直接进入血液系统。
在注射部位施加轻柔压力以止血,然后让小鼠恢复。
注射的细菌在体内系统性循环并到达心脏。随后,它们在心脏内定植,引发感染。
随后,从安乐死的小鼠体内收获感染病原体的心脏。
使用匀浆器对心脏进行匀浆,以从组织中释放细菌。
在多孔板中对匀浆液进行连续稀释。
将每个稀释液的小体积样品点在琼脂平板上,并使其干燥。
孵育平板,使细菌增殖并形成可见的菌落。
计数菌落以确定感染小鼠心脏中的细菌载量。
为了将单核细胞增生李斯特菌(L. monocytogenes)接种到小鼠体内,将一只动物放入固定装置中,以在注射过程中限制其活动。使用酒精棉片清洁注射部位并扩张尾静脉。
然后,使用1毫升注射器和27.5号针头,将200微升所需培养物轻轻注入小鼠尾静脉。注射后如有出血,可用纸巾按压止血,然后将动物放入洁净的笼具中。根据生物安全柜内的文本操作规程,在动物处死后最多72小时内,将其固定在解剖板上,并用70%乙醇浸润动物体表。
在腹部和胸部做一个从阴道口延伸至剑突、并继续向两臂腋窝延伸的Y形切口。将皮肤向后拉开,从腿部取下针头,并用其撑开解剖部位,轻轻切开腹膜,暴露肠管、胃、肝脏和脾脏。
现在,找到膈肌并沿肋骨轻轻剪开,以观察胸腔。从剑突和胸骨剪开直至颈部,打开胸腔,暴露心脏和肺。用镊子轻轻夹住心脏的心尖并提起,使主动脉和肺动脉产生张力。然后剪断血管,取下心脏并放入另一管水中。
根据文本方案准备匀浆器后,将一个肝脏匀浆至少两分钟,或直至肉眼看不到器官的任何可见部分为止。使用镊子从探头上去除任何大块碎片。
所有器官样品匀浆完成后,对肝脏和脾脏样品进行10倍至10,000倍的系列稀释,对心脏样品进行10倍至1,000倍的系列稀释。将各稀释液点样接种于预热的LB琼脂平板上。未稀释的样品可单独接种于平板,以确认器官组织已充分感染。
待平板干燥后,将平板置于37摄氏度的培养箱中。用封口膜包裹稀释样品的96孔板,并放入-80摄氏度的冰箱中保存。
第二天,计数菌落数量,并利用稀释度计算每个器官中的细菌总数。
本实验方案展示了在注射单核细胞增生李斯特菌后,定量小鼠心脏中细菌载量的方法。了解细菌在心脏中的定植对于研究感染性疾病至关重要。
定量小鼠心脏中的细菌载量可直接评估全身感染的严重程度,从而在临床前模型中对候选抗菌药物进行机制性风险评估。该方法通过将病原体负荷与心脏病理变化相关联,支持靶点验证,为传染病研究项目的决策提供依据。该技术可提高心血管感染研究中转化生物标志物一致性预测的可信度。
该方法可整合到从靶点验证、先导物筛选至临床前疗效测试的整个发现流程中,并在各个阶段提供定量的感染评估指标。
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最后更新:22 八月 2026