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取一只固定好的小鼠,用酒精清洁其尾巴,以减少注射部位的污染并扩张静脉。
将致病菌Listeria monocytogenes注入尾静脉,使其直接进入血液系统。
在注射部位施加轻柔压力以止血,然后让小鼠恢复。
注射的细菌在体内系统性循环并到达心脏。随后,它们在心脏内定植,引发感染。
随后,从安乐死的小鼠体内收获感染病原体的心脏。
使用匀浆器对心脏进行匀浆,以从组织中释放细菌。
在多孔板中对匀浆液进行连续稀释。
将每个稀释液的小体积样品点在琼脂平板上,并使其干燥。
孵育平板,使细菌增殖并形成可见的菌落。
计数菌落以确定感染小鼠心脏中的细菌载量。
为了将单核细胞增生李斯特菌(L. monocytogenes)接种到小鼠体内,将一只动物放入固定装置中,以在注射过程中限制其活动。使用酒精棉片清洁注射部位并扩张尾静脉。
然后,使用1毫升注射器和27.5号针头,将200微升所需培养物轻轻注入小鼠尾静脉。注射后如有出血,可用纸巾按压止血,然后将动物放入洁净的笼具中。根据生物安全柜内的文本操作规程,在动物处死后最多72小时内,将其固定在解剖板上,并用70%乙醇浸润动物体表。
在腹部和胸部做一个从阴道口延伸至剑突、并继续向两臂腋窝延伸的Y形切口。将皮肤向后拉开,从腿部取下针头,并用其撑开解剖部位,轻轻切开腹膜,暴露肠管、胃、肝脏和脾脏。
现在,找到膈肌并沿肋骨轻轻剪开,以观察胸腔。从剑突和胸骨剪开直至颈部,打开胸腔,暴露心脏和肺。用镊子轻轻夹住心脏的心尖并提起,使主动脉和肺动脉产生张力。然后剪断血管,取下心脏并放入另一管水中。
根据文本方案准备匀浆器后,将一个肝脏匀浆至少两分钟,或直至肉眼看不到器官的任何可见部分为止。使用镊子从探头上去除任何大块碎片。
所有器官样品匀浆完成后,对肝脏和脾脏样品进行10倍至10,000倍的系列稀释,对心脏样品进行10倍至1,000倍的系列稀释。将各稀释液点样接种于预热的LB琼脂平板上。未稀释的样品可单独接种于平板,以确认器官组织已充分感染。
待平板干燥后,将平板置于37摄氏度的培养箱中。用封口膜包裹稀释样品的96孔板,并放入-80摄氏度的冰箱中保存。
第二天,计数菌落数量,并利用稀释度计算每个器官中的细菌总数。