2011年3月30日
这个协议描述一个过程来研究从骨骼肌中分离出的线粒体呼吸。这种方法改编自Scorrano等。(2007年)。线粒体的分离过程中需要约2小时。线粒体呼吸在大约1个小时就可以完成。
本实验的总体目标是分离线粒体并进行线粒体呼吸测定。首先从喷雾dly大鼠中分离骨骼肌,然后将肌肉组织匀浆化,并通过离心法分离线粒体。
然后使用 Bradford 法测定蛋白质浓度。最后,通过多通道生理记录仪测量线粒体呼吸。最终可获得结果显示通过不同线粒体呼吸状态的耗氧量。
该方法有助于回答骨骼肌研究领域中的关键问题,例如不同干预措施对线粒体功能的影响。尽管该方法可用于研究骨骼肌代谢,也可应用于肝脏、脑、肾或几乎任何其他组织。在开始实验前,为分离骨骼肌,需配制以下溶液:磷酸盐缓冲液(P-B-S)、含10毫摩尔EDTA的P-B-S、线粒体分离缓冲液一(又称IB一)、分离缓冲液二(又称IB二)以及实验缓冲液(eb)。
请参阅随附的书面实验方案以获取操作说明。接下来,打开离心机并将其温度设置为 4 °C。打开水浴锅并将其温度设置为 37 °C。
在一个合适的容器中,将三个 10 毫升烧杯、Potter 匀浆器、Gem 组织研磨器、小型手术剪刀和 10 个微量离心管置于冰上。整个实验过程中,所有物品必须始终保持冰冻状态。将 IB1 和 IB2 放在冰上,EB 放入温水浴中。
然后将以下溶液加入置于冰上的三个烧杯中:烧杯一,10 毫升 PBS;烧杯二,10 毫升 PBS-EDTA;烧杯三,3 毫升 ib。一。按照当地机构动物护理与使用委员会批准的程序处死一只大鼠。
接下来用镊子和梅奥剪刀迅速分离250至500毫克骨骼肌组织。在烧杯一中冲洗,然后转移至烧杯二中以匀浆化肌肉组织。首先将其转移至烧杯三,最后用剪刀剪碎。
将溶液转移至 Potter-Elvehjem 匀浆器中,使用电动研杵在冰上匀浆肌肉组织 10 次,全程保持离心管处于冰上。接着,将匀浆液转移至预冷的 2 毫升微量离心管中,在 4°C 条件下以 700 × g 离心 10 分钟。将上清液(S)转移至新的预冷微量离心管中,弃去沉淀物。
在4 °C条件下,将S上清液以10,500 ×g离心10分钟,将上清转移至新的预装微型离心管中,并标记为SN1和肌肉类型Reese。将沉淀重悬于500 µL的IB2中,然后在4 °C条件下以10,500 ×g离心10分钟。将上清转移至新的预装微型离心管中,并标记为SN2和肌肉类型。
将最终的线粒体沉淀重悬于 100 微升 IB2 中。在微型离心机中离心数秒。若有沉淀,则将上清液转移至新的预装微量离心管中,并弃去沉淀。氧电极的校准是本方案中的关键步骤,必须每天进行。
在分离线粒体的过程中可完成电极的校准。首先,将 100 毫升蒸馏水加入 250 毫升的烧瓶中,剧烈搅拌 20 分钟。为使水与大气气体达到平衡,用几滴 50% 氯化钾覆盖 GRAT 电极。
接下来,将一小片蓝色Rizla卷纸放在电极上方,然后在其上放置一片PTFE膜。
使用环状施用器安装内环,然后将外环置于电极槽中。连接电极,并组装较大的塑料环形底座、线粒体室和水管。打开 GRAT 箱并启动 GRAS 软件。
将平衡后的水加入线粒体室中。然后加入搅拌子以启动搅拌。单击硬件。
然后以一定速度搅拌。将速度调节至60并点击开始。接着,开始一项新实验。
单击校准,然后选择液相校准。对于第一箱,将温度更改为37摄氏度,然后单击两次“确定”。当“覆盖”变为“确定”时,单击它并打开氮气罐。
将连接至氮气罐的探针插入腔室,并建立零氧环境。当系统从“覆盖”状态切换后,点击“确定”。吸除水相,向线粒体腔室中加入 500 µL EB 溶液。
用活塞密封腔室。如果使用多个盒子,请对每个盒子从校准步骤开始重复操作。启动新实验并运行约一分钟。
为稳定信号,向每个腔室中加入适量的线粒体悬液,使蛋白量达到150微克。标记该事件并继续运行。一分钟后,加入10微升预热的250毫摩尔谷氨酸和125毫摩尔苹果酸,使终浓度为5毫摩尔谷氨酸和2.5毫摩尔苹果酸,标记该事件,继续运行一分钟。
此步骤定义为状态二。接下来,加入7.5 µL的10 mM dNTP,使其终浓度为150 µM。然后标记并运行30秒。
此定义为状态三。加入另外 7.5 µL 的 10 mM ADP,运行 1.5 分钟。加入 0.5 µL 的冷 10 mM 寡霉素,终浓度为 1 µM,运行 3 分钟。
此定义为状态四。加入一微升冷的、0.1毫摩尔的FCCP,使终浓度达到0.2微摩尔标记,然后让RUM反应三分钟。此定义为状态五。
实验结束后,终止实验并保存数据。使用筏式软件获取呼吸速率,并输入归一化因子。
若加入150微克线粒体蛋白,则归一化因子为0.15。计算不同呼吸状态下的归一化呼吸速率。通过将三态呼吸速率除以四态呼吸速率,计算呼吸控制比(RCR)。
该图展示了骨骼肌线粒体耗氧量的代表性记录。在电极信号稳定后,将线粒体样品加入 GRAT 反应室。状态二呼吸通过添加谷氨酸和苹果酸启动。
加入ADP可增加耗氧量,从而定义三态呼吸。通过添加寡霉素抑制ATP合酶,以获得四态呼吸。
最后,加入FCCP以解偶联线粒体呼吸。该图显示了状态2、3、4和5的代表性耗氧速率。每次实验均计算呼吸控制比(RCR)。
RCR 大于 4 被视为线粒体制备具有活性的证据。在进行该实验操作时,必须始终将线粒体样品置于冰上。完成该操作步骤后。
还可以进行其他方法,如蛋白质印迹(Western blots),以回答有关线粒体蛋白含量等进一步的问题。观看本视频后,您应能够充分理解如何从骨骼肌中分离线粒体,以及如何开展线粒体呼吸实验。
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本方案描述了从骨骼肌中分离线粒体并测定其呼吸作用的实验流程。该方法可通过分析氧气消耗来评估线粒体功能。
从骨骼肌中分离出具有功能的线粒体,可为临床前研究中代谢靶点的机制性风险评估提供支持。定量呼吸测定结果为目标验证和通路分析提供了可预测的依据。该方法通过在化合物筛选前确立线粒体活性阈值,支持早期“进行/终止”决策。
该方法适用于从假设验证到先导物鉴定的整个发现流程,可支持代谢疾病中靶向线粒体的研究项目。