细胞内复制检测实验 志贺氏菌 在人结肠上皮细胞中

0 次观看4:22 分钟 • July 1st, 2026

取一培养物,为志贺氏菌(Shigella),一种致病性细菌。

将细菌悬液和培养基加入培养板中已分化的类人结肠上皮单层细胞。

离心以促进细菌与上皮细胞之间的直接接触。

孵育以促进细菌内化。

用缓冲液洗涤以去除细胞外细菌。

加入含抗生素的培养基。孵育期间,抗生素可选择性地清除胞外细菌,而不会影响胞内细菌。

移除培养基。用缓冲液洗涤细胞,以去除死亡的细菌。

添加新鲜的含抗生素培养基,以防止交叉污染。

孵育以使内化的细菌增殖。

移去培养基,并用缓冲液洗涤细胞。

加入含去垢剂的缓冲液以裂解含有细菌的上皮细胞。

刮取裂解的细胞,并收集到微量离心管中。

涡旋以释放裂解细胞中的细菌。

回收的细菌可用于后续分析。

首先,取过夜培养的Shigella菌液并涡旋混匀。将100 µL菌液加入含有5 mL新鲜TSB培养基的培养管中。在37°C、250 RPM振荡条件下培养菌液,直至菌液在600 nm处的光密度达到0.7。

将两次培养的志贺氏菌(Shigella)各十的八次方个菌落形成单位转移至2毫升微量离心管中。在室温下以17,000 g离心2分钟,使细胞沉淀。吸除上清液。

加入1毫升预热的PBS,充分重悬沉淀。再次离心细胞后,将沉淀重悬于2毫升预热的DMEM中,并涡旋混匀细胞悬液。然后,向6孔板中HT-29结肠上皮单层细胞的每孔加入1毫升重悬的Shigella菌液和1毫升DMEM。

为确保细菌与HT-29细胞充分接触,将六孔板在室温或37摄氏度下以2,000 g离心10分钟。将六孔板置于37摄氏度、5%二氧化碳环境中孵育45分钟。孵育结束后,吸除每孔中的培养基。向每孔加入1毫升预热的PBS,轻轻洗涤。

然后,每孔加入 2 毫升含 50 微克/毫升庆大霉素的预温 DMEM 培养基,在 37°C、5% 二氧化碳条件下孵育 30 分钟。用 1 毫升 PBS 缓冲液洗涤感染的 HT-29 细胞 3 次。每孔加入 2 毫升含庆大霉素的预温 DMEM 培养基,在 37°C、5% 二氧化碳条件下孵育最多 24 小时,以促进胞内复制。

孵育结束后,用 1 毫升 PBS 洗涤细胞两次。每孔加入含 1% Triton X-100 的 1 毫升 PBS 以裂解 HT-29 细胞。然后使用细胞刮刀或弯头移液器吸头,将裂解的细胞从孔底刮下,并将混合液转移至 1.7 毫升微量离心管中。

将每管涡旋振荡至少30秒,以进一步使Shigella从裂解的真核细胞中分离。用PBS对裂解液进行10倍系列稀释。取100微升系列稀释液接种于含TSB的刚果红平板,37摄氏度过夜培养。