0 次观看 • 3:26 分钟 • July 31st, 2026
从含有贴壁哺乳动物细胞的孔开始,这些细胞共转染了编码病毒蛋白的质粒以及非抑制性对照RNA或抑制性RNA。
在对照孔中,病毒蛋白(包括逆转录酶(RT))组装成成熟的病毒样颗粒(VLPs),并释放到上清液中。
在检测孔中,抑制性RNA可抑制病毒蛋白的表达,从而减少病毒样颗粒(VLP)的产生。
将上清液转移至裂解缓冲液中,孵育以裂解病毒样颗粒(VLPs),释放逆转录酶(RT)。
加入含有放射性标记的核苷酸、引物、合成RNA模板和辅助因子的缓冲液,然后孵育。
逆转录酶将标记的核苷酸掺入新合成的链中。
将混合物点样到带电荷的滤纸上,干燥后用缓冲液洗涤,以去除未结合的核苷酸。
进行酒精清洗以去除残留的盐分。
通过测量放射性来定量逆转录酶(RT)活性,以指示病毒样颗粒(VLP)的产生。
实验样品中病毒样颗粒产量降低表明抑制性RNA发挥了抑制作用。
进行病毒增殖检测时,从培养箱中取出24孔细胞培养板后,将其转移至BSL-3级细胞培养生物安全柜中。轻轻摇晃培养板,然后从每孔中吸取150微升上清液,转移至96孔平底板中对应的孔,用于定量检测HIV-1的产生。另取5微升上清液,加入含有25微升病毒裂解液的96孔板的对应孔中。
将混合物在室温下孵育5分钟后,将培养板转移至放射性工作台。接着,配制放射性混合液,并向每孔病毒上清液和裂解混合液中各加入25 µL。将培养板在37 °C条件下孵育2小时。
取5微升反应混合物点样至玻璃纤维DEAE滤膜纸上的相应方格中,静置10分钟使其干燥。使用2×SSC缓冲液洗涤滤纸5次,每次5分钟,随后用95%乙醇洗涤2次,每次1分钟。待滤纸干燥后,将其密封于样品袋中。
将含有滤膜纸的样本袋剪下并装入样品盒中,然后将样品盒插入微孔板闪烁计数器内,启动计数器。对于任何病毒定量方法,将每个测试RNA所得数值除以相应的阴性对照值,再将结果乘以100,得到每个测试RNA重复样本的HIV-1产生抑制率(%)。
本文介绍了一种利用逆转录酶(RT)活性检测作为病毒样颗粒(VLP)产量的定量指标,评估靶向抑制HIV-1产生的RNA分子之有效性和毒性的实验方案。该方法包括将质粒和待测RNA共转染哺乳动物细胞,随后检测上清液中的RT活性,以评估病毒基因表达的抑制情况。
定量逆转录酶(RT)检测为评估靶向 HIV-1 产生的 RNA 干预手段的有效性提供了可靠且可扩展的检测读数。该方法通过将分子抑制作用与病毒样颗粒(VLP)释放的功能性抑制相关联,实现早期靶点验证和机制层面的风险排除。该技术可支持抗病毒药物研发管线中候选基因或药物疗法的项目筛选与优先级排序。
这种基于RT的检测方法融入了从早期发现到先导化合物鉴定的连续过程,架起了抗病毒候选药物分子设计与临床前验证之间的桥梁。
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最后更新:29 八月 2026