0 次观看 • 4:30 分钟 • July 31st, 2026
取一悬液,其中含有感染了伯氏疏螺旋体噬菌体的Borrelia burgdorferi细菌。
离心悬浮液,收集含有噬菌体颗粒和细胞碎片的上清液。
加入盐溶液并振荡孵育。
盐溶液能够实现噬菌体颗粒与宿主来源的残留大分子的分离。
离心悬浮液并收集含有噬菌体颗粒的上清液。
加入聚乙二醇(PEG),它作为一种分子拥挤剂,可促进噬菌体颗粒的沉淀。
冰上孵育,然后离心。
弃去上清液。
将沉淀重悬于缓冲液中,然后转移至微量离心管。
用氯仿处理以溶解基于脂质的细胞碎片。
离心试管并收集含有伯氏疏螺旋体噬菌体的上层水相。
重复加入氯仿、混匀、离心和收集步骤,以确保完全去除污染物。
将分离的噬菌体颗粒在低温条件下保存,以供后续使用。
将制备好的培养物补充 manuscript 中所述的适当浓度的抗生素,并在 33 摄氏度下孵育样品 72 至 96 小时。为制备 PEG 沉淀溶液,按照 manuscript 中的描述,配制 500 毫升 5 摩尔氯化钠溶液、500 毫升 40% PEG 溶液以及 100 毫升悬浮培养基。为进行灭菌,将溶液高压灭菌,使用前冷却,并在室温或 4 摄氏度下保存。
对于从供体 Borrelia burgdorferi 克隆中通过 PEG 沉淀噬菌体的操作,在培养 72 至 96 小时后,于 4 摄氏度下以 8,000 g 离心 20 分钟。将上清液倾入干净的 50 毫升锥形管中,并弃去细胞沉淀。加入五摩尔氯化钠,使其终浓度为一摩尔。
充分混匀后,在室温下轻轻摇动一小时。在4°C条件下,以8,000 g离心10分钟。按照之前的方法,将上清液倾入干净的50毫升锥形管后,向上清液中加入40% PEG-8000溶液,使其终浓度为10%。充分混匀,置于冰上至少一小时,可长达过夜。
按照先前所述方法,在 4 摄氏度下以 8,000 g 离心样品 20 分钟。弃去上清液,并尽可能去除多余的液体,但不得丢失含有噬菌体颗粒的沉淀。用少量悬浮液重悬沉淀,并用悬浮液冲洗瓶壁,以收集可能存在的噬菌体颗粒。
根据重悬体积,向回收的噬菌体样品中加入等体积的氯仿。充分混匀样品后,在8,000 g 离心10分钟。随后,将水相转移至洁净离心管中,注意避免接触任何厚实的界面层。
在确定第一次氯仿处理后回收的体积后,再次用相当于该体积10%的氯仿处理样品。转移水相至洁净的离心管中,注意避免混入任何界面或有机相。立即使用噬菌体,或将其在4摄氏度下保存。
本文详细介绍了一种利用聚乙二醇(PEG)介导沉淀和氯仿抽提法从 Borrelia burgdorferi 悬液中分离伯氏疏螺旋体噬菌体颗粒的实验方案。该方法可使研究人员获得纯化的噬菌体颗粒,用于后续的遗传操作以及对莱姆病螺旋体的研究。
从Borrelia burgdorferi培养物中高效纯化伯氏螺旋体噬菌体颗粒,可实现莱姆病研究中的精确基因操作和功能研究。该技术有助于传染病研究项目在早期阶段进行靶点验证和机制性风险排除。可靠的噬菌体分离方法为基因工具开发和转化医学研究提供了可重复的实验流程基础。
该噬菌体纯化方案适用于早期发现与基因工具开发的交汇环节,可支持从假设验证到临床前模型构建的各项工作流程。
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最后更新:29 八月 2026