Name: 鼠类外科的原则，为新的外科医生 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-06T20:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 29 s
Description: 学习啮齿动物无菌手术的基本原则，包括无菌区的建立、手术区域准备、动物与外科医生的术前处理以及术后护理。本视频演示了如何最大程度降低感染风险并确保动物福利。

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1. 手术前需了解有关在科研与教学中使用动物的法律与伦理要求
<ol>
	<li>所有外科手术操作必须获得当地伦理或法律机构（如 IACUC、伦理委员会或内政办公室等）的批准。</li>
	<li>在开始操作前，务必确保已获得上述批准。</li>
	<li>若对外科手术的批准或动物使用许可存在任何疑问，不得进行操作。</li>
</ol>
2. 理解无菌技术<ol>
	<li>无菌的概念
	<ol>
		<li>无菌技术的目标是在开始手术前尽可能减少或消除动物体表及环境中存在的正常菌群。这意味着手术器械需经过灭菌处理，手术操作台面需进行消毒，同时动物体表和外科医生的手部也需消毒。</li>
		<li>如果手术操作得当，则除镇痛外，无需使用预防性抗生素或其他任何治疗措施。</li>
		<li>即使采用出色的无菌技术，仍可能将来源于手术对象的细菌带入手术创口。正确的无菌技术可将感染性病原体（主要是细菌）引入手术部位的风险降至最低。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>无菌区域
	<ol>
		<li>无菌区域包括手术操作区、动物身上已准备好的区域以及外科医生身体的前部。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>无菌状态的破坏
	<ol>
		<li>当外科医生触碰无菌区域以外的物体时，即发生无菌状态的破坏。这些物体可能包括其面部、照明设备、动物身上未消毒的区域或非无菌器械。</li>
		<li>这正是可能需要使用预防性抗生素的原因。</li>
		<li>请记住，正在进行一项特殊的操作。应保持冷静、专注且操作精准。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 手术准备<ol>
	<li>啮齿类动物手术无需专用手术室。理想情况下，手术应在实验室内的独立区域进行，例如生物安全柜或层流柜。无论选择何种区域，该区域都应整洁、光线充足，并远离人员走动频繁的通道。啮齿类动物手术通常在实验台面上进行。在布置手术区域前，应使用消毒剂彻底清洁台面。</li>
	<li>手术人员配备助手会有所帮助。助手可协助实施麻醉、准备动物以及监测术后恢复情况。这使得主刀人员可在动物准备的同时进行自身准备，从而缩短动物处于麻醉状态的时间，并可能提高手术通量。</li>
	<li>应将手术区域划分为三个独立的区域：准备区、手术区和恢复区。</li>
	<li>在准备区，准备以下所需物品：
	<ol>
		<li>润滑性眼膏</li>
		<li>毛发剪或剃刀</li>
		<li>纱布</li>
		<li>外科擦洗液
		<ol>
			<li>常用的外科擦洗液包括碘伏或氯己定。</li>
			<li>70%异丙醇也常用于外科擦洗过程。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在手术区，准备并摆放所需物品：
	<ol>
		<li>用于维持啮齿类动物体温的热源
		<ol>
			<li>理想的热源是循环水加热垫。电加热垫不适用于手术。也可使用装有温水的外科手套或化学暖手袋。若使用后两种方式，必须在手术过程中密切监测其温度。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>手术平台
		<ol>
			<li>可在热源上方放置无菌防水垫作为手术平台。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>一次性用品
		<ol>
			<li>可能包括：无菌手术巾、纱布、棉签、用于动物给药的液体、组织灌洗液。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>无菌器械
		<ol>
			<li>所需器械种类因手术类型而异，但通常包括手术刀、组织牵开器、镊子、止血钳和剪刀。</li>
			<li>若需在同一台手术中对多个动物使用相同器械，应配备器械灭菌器或灭菌溶液
			<ol>
				<li>动物间手术器械的灭菌常采用热珠灭菌器。</li>
			</ol>
			</li>
		</ol>
		</li>
		<li>用于关闭手术切口的材料
		<ol>
			<li>所用材料取决于手术部位和具体应用，可能包括：缝线与缝针、皮肤钉合器与钉合钉、或组织胶</li>
		</ol>
		</li>
		<li>其他任何特殊设备（立体定位仪、植入物、手术显微镜）</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. 手术器械的准备<ol>
	<li>手术开始前，器械应保持清洁且无菌。通常通过制备完整的手术包并进行高压灭菌来实现。</li>
	<li>同一套器械可在多次啮齿类动物手术中使用，而无需重复高压灭菌和重新打包，但在不同动物之间必须进行清洁和灭菌。
	<ol>
		<li>若使用高温珠灭菌器，务必在灭菌后留出足够时间使器械冷却。可通过将器械浸入无菌水中实现冷却。</li>
		<li>也可使用化学灭菌剂，但需要较长的接触时间（约10分钟，可能需30至60分钟），且使用后需进行冲洗。酒精不属于灭菌剂。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将器械按使用顺序排列在无菌防水手术巾上。</li>
</ol>
5. 手术前动物准备<ol>
	<li>术前需给予的三种处理为麻醉、镇痛和抗生素。
	<ol>
		<li>手术必须进行麻醉。麻醉剂可通过吸入或注射途径给予。
		<ol>
			<li>目前最常用的吸入性麻醉剂是异氟烷。</li>
			<li>最常用的注射类麻醉剂是氯胺酮与赛拉嗪的组合，可能另加一种镇静剂。</li>
			<li>请咨询您所在机构的兽医人员以确定合适的剂量。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>建议使用预先镇痛（pre-emptive analgesia），且应在手术开始前给予。
		<ol>
			<li>常用的非甾体类抗炎药包括氟尼辛和卡洛芬。</li>
			<li>可用的阿片类药物可能包括丁丙诺啡、吗啡或芬太尼。</li>
			<li>请咨询您所在机构的兽医人员以确定合适的药物剂量和给药途径。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>若手术操作规范，通常无需使用抗生素，仅在某些高风险的胃肠道手术中例外。
		<ol>
			<li>如需使用抗生素，应在围手术期给予（即首次切口前）。</li>
			<li>请咨询您所在机构的兽医人员以确定合适的抗生素种类、剂量和给药途径。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>手术切口部位的准备
	<ol>
		<li>剃除切口部位的毛发。通常应剃除面积约为预计切口大小三倍的区域。剃毛和准备区域的大小可能受限于动物体型或身体部位的大小。</li>
		<li>使用多次涂抹的外科擦洗液和异丙醇对剃毛区域进行消毒。通常先使用擦洗液，再使用酒精，最后以一次擦洗液涂抹结束。</li>
		<li>外科擦洗应以环形方式进行，从中心开始向外螺旋扩展；对于较小的动物，也可采用单向方式进行。
		<ol>
			<li>若采用单向擦洗，应在剃毛区域的头侧边缘放置无菌纱布，覆盖动物的毛发。通过无菌纱布轻柔抓握并固定动物。将擦洗液和酒精从无菌纱布处单向涂抹远离。</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将动物转移至手术区域
	<ol>
		<li>转移动物时应使已准备好的手术部位朝上，且不得触碰已准备的部位。</li>
		<li>将动物放置于手术区域时，应使手术部位朝上，面向外科医生。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>为动物铺巾
	<ol>
		<li>若由助手为动物铺巾，助手必须注意：铺巾的外表面被视为无菌区域的一部分，不得由助手触碰。铺巾操作通常由外科医生完成，铺巾也包含在手术包内。</li>
		<li>一般推荐使用标准的一次性防水纸巾。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
6. 为手术做好外科医生的准备<ol>
	<li>外科医生的准备工作应强调即将进行一项特殊操作，在此过程中，医生必须时刻注意自己进出无菌区域的每一个动作。</li>
	<li>头发和面部通常分别用帽子和口罩遮盖。这些防护用品应在手术开始时使用新的，但无需在每只动物之间更换。</li>
	<li>外科医生应穿戴一次性手术衣、清洁的一次性实验服，或至少是清洁的实验服。这些衣物无需在每只动物之间更换，但应在不同手术批次之间更换。</li>
	<li>手术前应彻底清洁双手。应使用外科手套或检查手套。若使用检查手套，佩戴前需用外科消毒剂清洗。手套应在每只动物之间更换。</li>
</ol>
7. 手术过程中<ol>
	<li>保持无菌区域。
	<ol>
		<li>当你的双手和手术区域已达到无菌状态后，必须小心移动，并牢记不要破坏无菌环境。这包括只能在无菌区域上放置器械，避免搔抓鼻部，以及仅通过无菌洞巾接触手术部位。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>组织处理
	<ol>
		<li>轻柔操作组织。保持组织湿润，尤其是在手术时间较长时。尽量减少组织腔隙的形成和不必要的解剖操作。</li>
		<li>正确的组织处理可降低术后感染的风险和几率，加快愈合速度，并减轻术后疼痛。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>补充丢失的液体
	<ol>
		<li>在啮齿类动物中，常用的补液途径为皮下或腹腔注射。对于小型动物应使用小体积液体，例如小鼠腹腔注射1–2 ml。</li>
		<li>加温的液体有助于防止体温下降。小鼠和大鼠的体温高于人类，因此液体温度应更高。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>维持体温
	<ol>
		<li>在手术期间将加热垫置于动物身下，以及在恢复期间置于笼内，是维持动物体温的标准方法。
		<ol>
			<li>使用加热垫时需谨慎——仅使用标明适用于手术的加热垫。其他类型可能导致热损伤。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>通过腹腔给予加温液体也可能有助于维持动物体温。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>手术显微镜——可能有助于某些操作（如显微血管手术、年长的外科医生等）。也可通过使用放大镜（如头戴式放大镜）等工具实现类似效果。</li>
</ol>
8. 术后恢复注意事项<ol>
	<li>动物应在平坦的纸垫料（无菌纸巾等）上恢复，而不是使用标准的动物饲养垫料。</li>
	<li>保持动物温暖。温暖有助于加快恢复。通常可通过将恢复笼的一半置于加热垫上，使动物在恢复过程中自行选择适宜的温度。</li>
	<li>在所有动物外观恢复正常之前，不得将其或笼具送回动物饲养区。任何接受手术的动物必须在笼内恢复自主翻身能力，并能正常活动后，方可返回饲养区。</li>
	<li>术后应监测动物是否出现意外的疾病或感染迹象。动物在手术后通常会轻微减重，但在适当镇痛及提供食物的情况下，应能迅速恢复体重。</li>
</ol>
9. 术后监测是成功手术的最后环节<ol>
	<li>术后 5 至 7 天内，监测动物的一般状况。
	<ol>
		<li>术后动物应精神良好、警觉且活跃。它们应能正常与同笼动物互动，正常进食饮水，并能维持物种特有的正常姿势。</li>
		<li>若动物出现精神抑郁、厌食或反应迟钝，应检查其原因。需考虑是否存在未处理的疼痛或感染。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>食物和液体摄入对恢复也至关重要。
	<ol>
		<li>术后摄食量可能会有所下降。可通过使食物和水更易于获取来缓解这一情况。
		<ol>
			<li>使用更长的饮水管可能有所帮助。</li>
			<li>每天在笼底提供湿润的食物，也可能促进动物进食。</li>
		</ol>
		</li>
		<li>大鼠使用某些镇痛药后可能出现异食癖（pica），需注意动物可能因误食不适当物品（如垫料）而导致损伤。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>应监测动物手术切口是否有感染迹象。危险期为术后前 7 天，需每日检查。
	<ol>
		<li>感染的迹象包括发红、肿胀、分泌物（脓性或浆液性）、疼痛或切口裂开（dehiscence）。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
10. 手术结束后，最后一步是评估手术的成功程度
<ol>
	<li>模型是否已诱导/部分移除/功能恢复？</li>
	<li>是否尽可能减少了疼痛？</li>
	<li>是否没有发生感染？</li>
	<li>成功！</li>
</ol>

<ol><li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22American+College+of+Laboratory+Animal+Medicine+Position+on+Rodent+Surgery%22">American College of Laboratory Animal Medicine Position on Rodent Surgery</a>. , Forthcoming.</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Animal+Welfare%2C+9+CFR%2C+Parts+1%2C+2%2C+and+3%22">Animal Welfare, 9 CFR, Parts 1, 2, and 3</a>. , Forthcoming.</li>
<li>Bradfield, J. F., Schachtman, T. R., McLaughlin, R. M., Steffen, E. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+and+physiologic+effects+of+inapparent+wound+infection+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim+Sci%22%5BJournal%5D)">Behavioral and physiologic effects of inapparent wound infection in rats.</a> Lab Anim Sci. 42, 572-578 (1992).</li>
<li>Brown, M. J., Pearson, P. T., Tomson, F. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+animal+surgery+in+research+and+teaching.+AVMA+Panel+on+Animal+Surgery+in+Research+and+Teaching%2C+and+the+ASLAP+%28American+Society+of+Laboratory+Animal+Practitioners%29%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Vet+Res%22%5BJournal%5D)">Guidelines for animal surgery in research and teaching. AVMA Panel on Animal Surgery in Research and Teaching, and the ASLAP (American Society of Laboratory Animal Practitioners).</a> Am J Vet Res. 54, 1544-1559 (1993).</li>
<li>Brown, P. A., Hoogstraten-Miller, S. Principles of Aseptic Rodent Survival Surgery: Parts I & 2. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBrown%2C+PA+%22Laboratory+Animal+Medicine+and+Management%22">Laboratory Animal Medicine and Management</a>. Reuter, J. D., Suckow, M. A. , International Veterinary Information Service. Ithaca. (2004).</li>
<li>Institute of Laboratory Animal Resources, National Research Council. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Guide+for+the+Care+and+Use+of+Laboratory+Animals%22">Guide for the Care and Use of Laboratory Animals</a>. , National Academy Press. Washington, DC. 556-570 (1996).</li>
<li>Popp, M. B., Brennan, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+vascular+access+in+the+rat%3A+importance+of+asepsis%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Long-term vascular access in the rat: importance of asepsis.</a> Am J Physiol. 241, H606-H612 (1981).</li>
<li>Rutala, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((APIC+guideline+for+selection+and+use+of+disinfectants%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Infect+Control%22%5BJournal%5D)">APIC guideline for selection and use of disinfectants.</a> Am J Infect Control. 24, 313-342 (1996).</li>
</ol>

所有作者均就职于查尔斯河实验室（Charles River），该公司是为科研提供经外科手术改造动物的主要供应商。

在啮齿类动物上进行的实验性手术很少由兽医或医师实施，而通常由生物医学研究人员操作，这些研究人员往往缺乏外科原理和无菌技术方面的正规培训。在科研环境中，手术技术通常是从同事那里学习而来，而这些同事本身也通常未接受过正规培训。在实验室中进行的手术可能主要被视为制备动物模型的一种方法，其目的是为研究建立一组实验动物。尽管特定的手术操作通常依赖手眼协调能力和技术技巧，而这些能力可以通过练习获得，但与无菌技术概念相关的原理和技能（从而实现无感染手术）无法仅通过练习获得，且往往未能充分传授给研究人员。
缺乏外科手术原则方面的正规培训，可能导致研究人员无法充分理解技术正确的外科操作与动物术前及术后护理具有同等重要性。综合考虑手术操作本身以及动物围术期护理，将有助于提高动物福利水平，并提升外科模型所获取数据的质量。例如，亚临床的术后感染可能干扰实验结果，而疼痛引起的动物行为和生理变化同样可能造成干扰。作为被捕食物种，大多数啮齿类动物表现出惊人的隐忍性，即使遭受术后疼痛或感染，也可能仅表现出极少的临床症状。此外，由于生物医学研究人员普遍缺乏对啮齿类动物疼痛或痛苦表现的识别训练，使得这些细微的症状更加难以察觉。同时，啮齿类动物主要在黑暗周期内活跃，而此时工作人员通常无法观察术后疼痛相关的临床和行为表现。本视频不能替代正规的外科培训——理想的培训应由研究机构提供并包含实际操作环节——但旨在为研究人员提供常见问题的概述，以及无菌操作和相关技术的可视化演示，以帮助其建立在啮齿类动物上实施可存活外科手术所需的基本操作能力。

A correction to author list has been made for article Principles of Rodent Surgery for the New Surgeon.

Erratum: Principles of Rodent Surgery for the New Surgeon.

新手外科医生的啮齿类动物手术原则

Principles of Rodent Surgery for the New Surgeon

出于科学和动物福利两方面的考虑，在对啮齿类动物实施手术之前，必须先接受基本外科概念和技术的培训。对于需要在研究方案中对啮齿类动物实施手术的学生、博士后学者及其他研究人员而言，他们可能并未在其必修课程中接受过正式的外科培训。手术本身是一项技术性技能，需要通过实践不断提高。然而，无菌技术的原则往往未被充分解释或教授。对于大多数新晋外科操作者而言，这些关键信息通常以零散的方式呈现，或在实际工作中边做边学，这两种方式均不理想。这也可能增加学习特定手术操作的难度，因为新手外科操作者需要同时学习手术技术和无菌原则。本文总结并提出了成功开展啮齿类动物手术所必需的基本外科技能和技术建议，旨在作为使用者所在机构提供实践培训的补充材料。

在尝试进行手术之前，新晋外科医生应接受基本外科技术和概念的培训。本文将介绍基本的外科注意事项，并重点阐述啮齿类动物的相关内容。

出于科学和动物福利两方面的原因，在尝试实施任何手术操作之前，应先接受基本外科概念和技能的培训。

本实验的总体目标是概述啮齿类动物无菌手术所涉及的原理和操作规范。首先介绍无菌区域的概念，随后演示如何正确准备手术工作区域，以确保操作流程顺畅并维持无菌环境。接着描述了为减少环境污染物引入和减轻啮齿类动物疼痛，准备实验动物和外科医生所必需的步骤。最后讨论了一些简单的外科注意事项，例如组织处理以及手术对象的术后护理。通常情况下，刚接触手术的研究人员会面临困难，因为他们需要同时学习无菌技术以及技术要求较高的外科手术操作。无菌技术的可视化演示非常重要，因为通常这些技能对于没有接受过正式医学培训的人员来说是全新的。在开始任何手术操作之前，必须获得当地法律或伦理监管机构的批准。这可能包括机构动物护理与使用委员会、伦理委员会或内政部门。本视频旨在作为您所在机构提供的实践培训的入门介绍或补充材料。啮齿类动物手术的目标是实现无菌操作，即术后无感染发生。为达到这一目标，外科医生必须对双手进行消毒，手术器械需经过灭菌处理，手术区域也应进行消毒。即使采用出色的无菌技术，仍可能将来自患者的细菌引入伤口。正确的无菌技术可降低感染性病原体（主要是细菌）进入伤口和手术部位的风险。无菌区域包括器械摆放的区域以及动物身上为手术准备的区域。无菌区域是指位于动物上方、下方及周围的空间，包括术者前方以及手术所需的所有器械和设备。如果器械、材料或术者移出无菌区域，术者必须立即停止操作并及时纠正技术失误，以避免感染风险。啮齿类动物手术不需要专用的手术室，但理想情况下应在生物安全柜或层流罩内进行。手术区域应保持整洁、光线充足，并避开人员频繁走动的区域。若在实验台面上进行手术操作，应使用消毒剂彻底清洁台面。在布置手术区域之前，应先规划手术区域，使其分为三个明确的区域。准备区域的准备工作、手术及术后恢复，需备齐所需物品，例如润滑剂、眼科软膏、毛发剪或橡皮擦、手术消毒液；在手术区域，应准备好并摆放好所需的物品，例如用于保持啮齿类动物体温的循环水加热垫和无菌防水垫。若在同一次手术过程中需进行多台连续手术，还应配备器械灭菌设备，如高温珠灭菌器。最后，备齐用于关闭手术切口的材料，包括缝线与缝合针、吻合钉施用器及吻合钉或组织胶。其他必要的设备，如立体定位仪、植入物或手术显微镜，也应提前准备妥当。恢复区域应配备一个放置在加热垫上的大笼子，手术开始时通常需在笼内铺上平整的纸垫作为垫料。所有器械应保持清洁且无菌。这通常通过制备完整的手术包并进行高压灭菌来实现。立体定位仪应于每次手术之间彻底清洁，与动物接触的部件（如耳杆或门齿杆）以及术者使用的旋钮等部件，均应在使用前及动物间消毒。旋钮可覆盖无菌敷料，以确保手术过程中的无菌状态。器械可用于多台啮齿类动物手术，无需每次进行高压灭菌和重新包装，但在不同动物之间必须进行清洁和灭菌处理，例如使用高温珠灭菌器。灭菌后应留出足够时间让器械冷却，再接触组织。此外，可通过浸入无菌水中对器械进行降温，酒精并非有效的灭菌剂。手术前通常会给啮齿类动物使用三类药物：麻醉剂、镇痛剂和抗生素。麻醉剂可通过吸入或注射方式给予。啮齿类动物最常用的吸入性麻醉剂是异氟烷。常用的注射用麻醉剂包括氯胺酮和赛拉嗪，可单独使用或联合其他镇静剂。许多麻醉剂会消除眨眼反射。在开始任何操作前，务必使用无菌眼膏保护动物眼睛。建议使用预先镇痛药物，包括非甾体抗炎药（如氟尼辛）和阿片类药物（如布托啡诺或吗啡）。准备手术区域时，首先剃除毛发。毛发可能将污染物带入手术切口，因此应剃除比预期切口范围更大、边缘更宽的区域。例如，对于1厘米的切口，通常需要准备3厘米的区域。这可能受到动物体型或解剖区域大小的限制。使用手术清洗剂和70%异丙醇酒精交替进行三次清洁，可采用环形或单向方式，最后一次应使用清洗剂，而非酒精。接下来，将动物摆放至手术部位朝上的位置。术者最后通过夹捏脚趾来确认动物已处于深度麻醉状态。术者准备过程中应强调即将进行一项特殊操作，在此过程中，术者必须时刻注意自身在无菌区域内外的每一个动作。头发和面部通常分别用手术帽和口罩遮盖。这些物品应在手术开始时保持全新，但在动物之间无需更换。手术前应彻底清洁双手。手术时应使用无菌外科手套。在动物之间或手套破损或在操作过程中被污染时，应更换手套。理想情况下，外科医生应穿戴一次性手术服，但干净的实验服（无论是 disposable 还是最近清洗过的）也可接受。实验服无需在每只动物之间更换，但应在不同的手术批次之间更换。开始手术时，使用无菌防水手术单进行铺巾。定期监测动物的氧合情况和麻醉深度。如果监测麻醉深度会破坏无菌环境，则应由手术助手执行此操作。一旦发生无菌环境破坏，应立即予以纠正。常见的操作失误包括触碰面部或接触无菌区域以外的物品（如光源），若发生无菌状态中断，应立即更换手套。对动物的额外支持措施应包括腹腔、皮下或静脉注射温暖的无菌生理平衡溶液，例如0.9%氯化钠。动物应在铺有纸巾或其他平整纸类垫料的温暖笼子中恢复，不可使用标准的动物饲养垫料。恢复笼可部分放置在加热垫上，以便动物在恢复活动能力后能够移动到较凉的区域。术后动物只有在能够正常在笼内活动后，方可送回动物饲养区。应使食物和水更易于获取。向食物中加水以使其软化，以便动物更容易进食。应密切观察动物是否有疼痛迹象，必要时需给予术后镇痛。同时，应监测手术伤口是否出现炎症或感染。伤口缝合应在手术后10至14天拆除。成功的手术表现为无感染，疼痛轻微，且研究人员实施手术的目的已达成。具体的手术操作及其目的在不同实验室之间可能有所不同，但无菌技术始终是必需的。通过手术操作来学习技能。手术操作进行得越多，您在维持无菌技术方面的信心和成功率就会越高。观看本视频后，您应该能够了解无菌技术的基本原则如何应用于啮齿类动物手术。每台手术都有其特定的技术要求，但无菌原则始终适用。

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

鼠类外科的原则，为新的外科医生

对啮齿类动物进行立体定位手术可实现对清醒且行为正常的动物进行靶向给药或电刺激，并进行记录。在本视频演示中，我们将展示对该长期沿用的手术方法的近期程序优化，这些优化显著提高了动物的术后存活率，并减少了术后体重下降。...

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本论文介绍了一种在大鼠模型中通过腹正中切口行锐性双极切除术进行5/6肾切除的标准化操作方案，旨在通过精确的方法学手段减少肾实质，从而诱导肾功能不全状态，并最大限度降低技术误差风险。...

通过中线剖腹术采用锐性双极切除法在大鼠中进行5/6肾切除术

本文介绍了在大鼠和小鼠中进行高密度微电皮层记录（µEcoG）的两种方案，包括手术、植入和记录方法。µEcoG记录分别与大鼠听觉皮层的层状多通道电极记录或小鼠体感皮层的光遗传学神经活动操控相结合进行。...

通过整合层状多通道电极、光遗传学与微阵列皮层电图在啮齿类动物中进行皮层处理的多尺度研究

位点特异性重组酶（SSR）技术及Cre/lox系统的出现推动了分子生物学的诸多进展，并已成为在转基因动物中评估基因功能的有力工具。本次访谈探讨了环化重组酶（Cre）介导的位点特异性重组机制，以及该酶的应用如何促进了条件性诱变技术的发展，相较于传统的基因敲除策略，条件性诱变具有显著优势。...

位点特异性重组酶（SSR）技术原理

支撑性平面双层膜是用于模拟免疫突触中分子相互作用的有力工具。本文中，我们展示了将已知可调控突触形成的细胞黏附蛋白锚定于脂质双层膜上层，并利用全内反射荧光显微镜（TIRF）观察突触形成的方法。...

用于免疫突触与运动突触研究的支撑性平面双层膜的构建

学习啮齿动物无菌手术的基本原则，包括无菌区的建立、手术区域准备、动物与外科医生的术前处理以及术后护理。本视频演示了如何最大程度降低感染风险并确保动物福利。

新手外科医生的啮齿类动物手术原则

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