2011年5月19日
本文介绍了一种使用 MicroPoint 脉冲激光器在 C. elegans 中切割神经元的实验方案。我们描述了系统的设置、线虫的固定以及标记神经元的切断操作。该方法的优点包括系统相对低成本,以及能够在活体(in vivo)中切断神经突或消融细胞。
本实验的总体目标是在活体中利用激光精确切割线虫的CL神经元。通过组装显微切割系统,并精确聚焦、校准及调节激光功率来实现该操作。当线虫被固定在显微镜载玻片上后,可对其神经元进行具有精确空间和时间控制的切割。
通过计数生长锥或追踪神经突长度,来测量被切断的神经元再生的程度。该技术相较于现有方法(如飞秒激光)的主要优势在于,微焦点脉冲激光系统成本较低,易于安装和维护,并且可轻松适应多种不同应用。尽管我们通常采用该方法研究 GABA 运动神经元的再生,但该系统也可用于消融其他细胞类型,例如皮肤、肌肉或特定的神经元突触。
该方法需要一个微焦点激光系统。激光器安装在复合显微镜的落射荧光端口上,包含一个与待切割细胞中荧光染料相匹配的单色分光镜、一个脉冲发生器以及一个用于操作激光器的脚踏板。显微镜至少应配备一个100倍、1.4数值孔径的油镜物镜和一个4倍物镜。
配备带有操纵杆操作的电动载物台,并将其安装在气浮台上以实现稳定照明。光源系统配有导光管和快门装置,并连接至微焦点激光器。该快门装置可用于独立调节照明强度,而不影响激光输出。
连接到计算机的相机需要至少 16 赫兹的帧率,并且必须在低光照条件下具有良好的工作性能。计算机需要配备成像软件(例如 Nikon Elements),以用于观察神经元、控制相机以及操作电动载物台。当设备完全组装后,用户可以单手聚焦显微镜,另一只手移动载物台,用脚踏板激活激光器,同时能够清晰地查看屏幕上的图像。
在大小如沙粒的生物体中切割神经元可能具有挑战性。为此,必须在三个维度上紧密聚焦激光。首先聚焦 Z 平面。
插入中性密度滤光片 ND 16 以在聚焦时衰减激光,实现更精细的聚焦,同时推入 ND 16 和 ND 4 荧光滤光片。接着,将微点激光设置为单脉冲模式,通过旋转开关进行选择,然后将滤光轮移至适当的长通阻挡滤光片位置。现在将一个带反射面的载玻片放置在载物台上,使用 4 倍物镜和透射光对其中的针孔进行聚焦。
聚焦后,在玻片上滴加一滴浸油,使用100倍物镜重新对针孔进行聚焦。然后使用光路切换手柄打开相机快门,并打开激光快门。若精确聚焦困难,可降低透射光强度,使针孔边缘清晰锐利。
为测试焦点,使用脚踏板发射激光。如果 Z 平面聚焦正确,镜面上应出现一个小孔。现在将显微镜略微聚焦到镜面载玻片平面的上方,再次发射激光。
这应会形成比第一次射击更小的孔,或完全不留痕迹。在聚焦于镜面载玻片下方时,也应观察到相同的结果。然而,如果产生的孔较大,则需使用消融头上的聚焦环重新调整激光焦点。
最后,确认小孔仍与目镜中的十字线正确对齐。在持续使用过程中,Z平面焦距通常无需频繁调整。要在XY平面聚焦激光,请在镜面上再打一个孔,然后进入Nikon Elements软件进行操作。
在采集菜单中启动实时捕获模式。在测量工具栏中,选择 ROI 编辑器,选择双十字工具,并拖动十字线使其与新孔的中心对齐。点击保存 ROI,然后退出编辑器以恢复实时捕获。
要使用鼠标操控载物台,请激活鼠标 XY 设置。此时激光已聚焦。将中性密度滤光片重置回原始位置,并将激光脉冲数设置为1到10,以备后续使用。
首先,配制含有3%熔融琼脂糖的M9溶液,并将约五毫升分装至一个50毫升离心管中。将该离心管置于55至65摄氏度的水浴中,其余溶液保存以备后续使用。现在使用两张带有标签的载玻片。
用胶带固定一对干净的载玻片,并滴加一滴琼脂糖以制备垫片,用于放置线虫。30秒后,琼脂糖将凝固,在10分钟内用移液器吸取3至5微升0.05至0.1微米的聚苯乙烯微球至垫片上,然后用铂金挑针迅速将5至10条转基因线虫排列在微球上,以便于观察其标记的神经元。为避免损伤线虫,需小心地将标准盖玻片轻轻盖在线虫上。
移动观察。线虫玻片现已准备好进行分类学观察。先用目镜在4倍物镜下找到线虫,再用100倍油镜重新对焦,关闭透射光,打开荧光,切换光路至相机。
使用鼠标将神经元置于十字线中心。现在用脚踏板触发激光。适当的激光功率将在一到两次脉冲内切断神经元。
过高的激光功率会导致线虫周围组织损伤或将其烧出孔洞。为调节激光功率,可移动衰减板。若激光强度减弱,可通过调整衰减板位置以维持切割能力。但此现象通常表明激光器中为 Kumar in four 40 型号所配备的 D 型电池需要更换,此时应正确执行更换操作。
激光切削在神经元中产生微小断裂。在某些情况下,损伤部位周围可能会形成微小瘢痕。每个动物实际切割的神经元数量通常为一到三个,但理论上并无限制。
操作完成后,通过垂直向上移动盖玻片来回收线虫,注意保持线虫留在琼脂糖垫上。切勿滑动移除盖玻片。使用尖头镊子将线虫周围的琼脂糖垫剪下。
将垫片置于含有 OP50 的新接种的 NGM 平板上,用 10 微升无菌 M9 液体释放线虫。在切除手术后 8 至 48 小时内可评估再生情况;为此,将健康的线虫重新装载到 3 至 5 微升聚苯乙烯微珠中,并观察其被切断的神经元中的神经元结构。远离切割位点的神经元远端残端将保持存在。远端和近端残端在切割后最初都会回缩,但再生应从近端残端发生。
可以通过观察生长锥的形成来评估再生情况。或者,可追踪并比较神经突的长度,通常在切割后24小时内,约60%至70%的GABA能神经元会形成生长锥。如果激光无法正常切割,可能是由于激光失焦,或者染料池中的染料需要更换。
此外,如果你发现线虫在移动,可能是因为琼脂垫过于湿润。我们发现,将琼脂垫放置约30秒后再将线虫置于其上,可避免此问题。另外,可以尝试使用较小尺寸的微珠来固定线虫。
最后,如果你发现轴突呈现串珠状外观,很可能是因为琼脂垫过于干燥。观看本视频后,你应该能够充分掌握如何搭建微点激光系统,如何固定线虫以进行切片,如何切割单个神经元,以及如何评估其后续的再生情况。
本文介绍了一种使用MicroPoint脉冲激光在秀丽隐杆线虫(C. elegans)中切割神经元的实验方案。该方法可在活体中精确切断标记的神经元,为多种应用提供了一种经济且灵活的手段。
精确的体内神经元损伤模型对于降低神经退行性疾病项目中靶点验证的风险至关重要。该激光轴突切除方法可在遗传可控的系统中实现可重复、定量的轴突再生评估,有助于深入理解修复通路的作用机制。通过为神经元损伤与再生研究提供一种经济高效、可扩展的平台,该方法有助于在早期发现影响神经元抗损伤能力及修复能力的潜在靶点。
该方法适用于早期发现阶段,可在确定先导化合物之前,通过再生结果的表型筛选支持靶点验证。