Name: 高通量筛选和生物传感与荧光 C。线虫菌株 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 53 s
Description: 了解利用双荧光报告基因在秀丽隐杆线虫中进行高通量筛选的方法，通过GFP和RFP检测化学库和环境污染物对基因表达的影响。该技术为发育生物学和毒理学研究提供了可靠的体内筛选平台。

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C. elegans 的转基因品系由秀丽隐杆线虫遗传学中心（明尼苏达大学，明尼苏达州，明尼阿波利斯）提供。本研究工作由美国国立卫生研究院（NIH）R21基金项目NS0667678-01资助，项目负责人为KS。所有作者均参与了数据的收集、分析与解释。CKL、KS和KPC参与了论文的撰写与修改。

1. 细菌线虫食物的制备
第1天
<ol>
<li>向500 ml添加了50 μg/ml链霉素的TB培养基中加入5 ml饱和的E. coli OP50细菌培养液，在37°C、225 rpm条件下于摇床培养箱中过夜培养。</li> 
</ol>
第2天
<ol start="2">
<li>将过夜培养的细菌培养物分装至十个50 ml离心管中，在冷藏离心机中以2,500 rcf离心20分钟。</li>
<li>弃去LB肉汤，将每份菌体沉淀重悬于10 ml液体线虫生长培养基（NGM）中。在摇床中水平振荡15分钟以充分重悬细菌。配制NGM缓冲液的方法：将3 g NaCl加入1 L去离子水中，高压灭菌。冷却至55°C后，依次加入以下无菌溶液：1 ml 1 M CaCl2、1 ml 1 M MgSO4和25 ml 1 M磷酸钾，pH 6.0。</li>
<li>将细菌培养物在冷藏离心机中以2,500 rcf离心20分钟。</li>
<li>弃去NGM缓冲液，称量细菌沉淀。</li>
<li>加入与沉淀体积相等的NGM缓冲液重悬菌体，将3 ml细菌浓缩液分装至15 ml离心管中，于-20°C保存。</li>
</ol>
2. 大规模 C. elegans 液体培养
我们使用一种转基因品系 VP596 (dvIs19[pAF15(gst-4::GFP::NLS)];vsIs33[dop-3::RFP])，该品系携带两种荧光报告构建体：Pgst-4::GFP14 用于监测 SKN-1 活性，Pdop-3::RFP17 用作线虫数量归一化的标准。
第1天
<ol>
<li>混合150 ml NGM缓冲液、1.5 ml LB肉汤、150 μl 5 mg/ml胆固醇（溶于乙醇）和75 μl 100 mg/ml链霉素。将混合物过滤除菌后加入一个1升无菌烧瓶中。 
注意：在NGM缓冲液中添加1% LB肉汤有助于防止线虫黏附在玻璃器皿和塑料器皿上，但该浓度不足以支持细菌生长。</li>
<li>采用标准次氯酸盐法同步线虫18。可在单个15 ml离心管中用5 ml次氯酸盐溶液（3.75 ml无菌水、1 ml家用漂白剂和250 μl 10 N NaOH）处理最多0.5 ml的产卵成虫。用无菌水洗涤释放出的卵，并将其重悬于10 ml NGM缓冲液中。</li>
<li>用NGM缓冲液将卵样品稀释100倍（例如，100 μl加入10 ml中），分别计数三个5 μl等分试样中的卵数。将平均卵数乘以200,000（100倍稀释因子 × 2,000）以估算卵的总数。</li>
<li>将200,000至200万枚卵加入含NGM缓冲液的烧瓶中，在20°C、100 rpm条件下振荡培养。</li>
</ol>
第2天
<ol start="5">
<li>加入虫卵至锥形瓶后至少16小时，用无菌血清移液管吸取约0.5 ml悬浮的线虫培养液。取三滴每滴5 μl的样品滴加至无菌培养皿盖上。将皿盖置于-20°C冰箱中冷冻1-2分钟以麻痹线虫。计数每5 μl中平均存活的孵化线虫数量，再乘以30,000（150 ml/5 μl），以估算孵化线虫的总数。</li>
<li>解冻一管冷冻保存的OP50菌液（见方案1.6），每50万条孵化线虫向线虫培养物中加入3 ml 50% OP50菌液。在20°C下以100 rpm振荡培养，线虫约51小时后将发育至L4幼虫期和年轻成虫期。细菌初始OD600应约为2.200。通过吸光度监测细菌量，若OD600降至0.900以下，需补充添加细菌。</li>
</ol>
3. 线虫收集与分配
第4天
<ol>
<li>使用无菌血清移液管将约 0.5 ml 悬浮的线虫培养物转移至标准 NGM 琼脂平板上。在体视显微镜下观察线虫，确保大多数为 L4 幼虫或年轻成虫。L4 幼虫在身体中部腹侧会有一个透明斑点，年轻成虫体型稍大，且无透明斑点。</li>
<li>将线虫培养物倒入无菌 50 ml 离心管中，并将离心管置于实验台上的试管架中。静置约 10 分钟，使线虫沉降。通过抽吸或移液去除上清液。 
注意：此步骤对于去除未孵化的卵或发育不良的线虫非常重要，因为这些杂质的沉降速度比 L4 幼虫和年轻成虫更慢。</li>
<li>将所有线虫收集至一个 50 ml 离心管中，用含 1% LB 肉汤的 NGM 缓冲液（NGM+LB）清洗 3–4 次，以去除细菌。 
注意：最好使用摆桶式离心机，以 500 rcf 离心 30 秒收集线虫，并更换为新鲜的 NGM+LB 缓冲液。</li>
<li>清洗后，用 NGM+LB 缓冲液将离心管补至 50 ml，并倒入定制的线虫分配烧瓶中。加入一个小的搅拌子并持续搅拌以保持线虫均匀悬浮。如上所述，计数三个 5 μl 液滴中的线虫数量，并用 NGM+LB 缓冲液稀释，直至每 5 μl 液滴含有 12–15 条线虫（约 2.5–3.0 条/μl）。 
注意：至少需要约 20 ml（60,000 条线虫）的悬浮液，以填充分配烧瓶和分配卡匣的死体积。每块 384 孔板约需 35,000 条线虫，即 11.5 ml 悬浮线虫液。</li>
<li>装载一个 10 μl 分配卡匣，并用 70% 乙醇预润洗进行灭菌。随后用无菌水预润洗以去除乙醇。</li>
<li>将分配卡匣末端插入烧瓶中，位置应刚好位于搅拌子上方，且不干扰其运动。确保线虫在整个烧瓶中保持均匀悬浮。设置分配器以低速分配，并设置 2 次预脉冲。预润洗并运行至少 10 ml 的悬浮线虫液。根据需要快速填充各孔板，以防止线虫在管路中沉降。</li>
<li>用透气封口膜密封孔板。</li>
<li>将孔板置于培养箱内的摇床上，在适合实验的温度下培养。切勿叠放孔板。</li>
</ol>
4. 荧光分析
<ol>
<li>将目标板放入微孔板读数仪中，使用适当的发射和激发波长测量每个孔的荧光强度（本实验所用滤光片：GFP 485/20ex 528/20em；RFP 540/25ex 590/35em）。</li>
<li>计算 GFP/RFP 的比值，并以对照孔（不含激活化合物）的读数进行归一化，以确定不同处理条件下荧光强度的准确倍数差异。</li>
</ol>
5. 代表性结果：
我们的SKN-1检测采用了一种染色体整合的双报告基因菌株（VP596）。如图1所示，线虫数量与分配体积之间具有良好的相关性。如图2A和2B所示，在384孔板中，每个孔的总GFP和RFP荧光信号在孔间具有高度可重复性。如图2C所示，在384个孔中，未诱导的Pgst-4::GFP荧光与Pdop-3::RFP呈线性相关。当以GFP/RFP比值表示时，荧光信号在384孔板的各个孔之间表现出极高的可重复性（比较图2D与图2A中的变异系数），表明Pdop-3::RFP报告基因具有降低变异性的能力。如图3所示，在384孔板中，使用SKN-1激活型异生物质（38 μM 桃叶珊瑚素）诱导后，GFP相对于RFP的诱导效应显著且高度可重复。
<img src="/files/ftp_upload/2745/2745fig1.jpg" alt="线虫数量与分配体积（μl）的关系图，r²=0.9352，p&lt;0.0001，线性相关性分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 1"> 图 1. 线虫数量与分配体积的关系。将线虫稀释至约 2/μl 后，分配至 24 孔板中，使用体视显微镜进行人工计数。每种体积重复 8 个孔，N = 8。
<img src="/files/ftp_upload/2745/2745fig2.jpg" alt="荧光检测结果；图A-D；CV，孔内数据；GFP与RFP相关性；统计分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Figure 2"> 图2. 分配至384孔板中的线虫总荧光信号具有可重复性。将线虫稀释至约2.5/μl，每孔加入30 μl至384孔板的每个孔中。所有孔的GFP（A）和RFP（B）荧光信号变异系数低于9%。（C）GFP荧光与RFP荧光高度相关。（D）计算GFP与RFP的比值后，变异系数降低至6%以下。（A、B和D）实线表示均值，虚线表示均值上下三个标准差。
<img src="/files/ftp_upload/2745/2745fig3.jpg" alt="相对荧光强度与孔号关系图，显示数据分布及Z因子，GFP/RFP分析。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 图3. Pgst-4::GFP 的激活具有强效性和一致性。将约75条L4期线虫分配至384孔板的所有孔中，并在每隔一列中加入38 μM 胡桃醌。孵育21小时后检测GFP和RFP荧光强度。所有对照孔（1.0）和胡桃醌处理孔（8.9）的平均相对荧光比值以实线标出。对照组均值上方三个标准差及胡桃醌组均值下方三个标准差以虚线标出。

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<li>Pulak, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Techniques+for+analysis%2C+sorting%2C+and+dispensing+of+C.+elegans+on+the+COPAS+flow-sorting+system%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Techniques for analysis, sorting, and dispensing of C. elegans on the COPAS flow-sorting system.</a> Methods Mol Biol. 351, 275-286 (2006).</li>
</ol>

未声明任何利益冲突。

我们介绍了一种用于培养和分装大量转基因线虫的方法。用于培养线虫的设备是进行分子克隆实验的实验室中的常规设备，而液体处理和荧光检测设备则是处理大量微孔板的实验室中的标准设备。其他分装大量活体 C. elegans 的方法需要昂贵的颗粒分选设备19。利用 Pgst-4::GFP 检测方法可用于筛选帽“n”颈样转录因子的小分子调节剂，并检测环境和食品样品中的外源性物质及氧化性污染物14,16。目前已有多种稳定且可诱导的转基因GFP报告系统，适用于多种信号通路和环境刺激4，因此本方法应可用于开发针对多种通路的调节剂，并检测广泛类型的污染物。

<table><tbody><tr><td>LB 肉汤</td><td>Research Products International Corp.</td><td>L24066</td><td></td></tr><tr><td>优质肉汤</td><td>Research Products International Corp.</td><td>T15100</td><td></td></tr><tr><td>Synergy HT 多功能微孔板读板仪</td><td>BioTek</td><td></td><td>滤光片：GFP 485/20ex 528/20em；RFP 540/25ex 590/35em</td></tr><tr><td>MicroFlo Select 分液器</td><td>BioTek</td><td></td><td></td></tr><tr><td>线虫分装瓶</td><td>Southern Scientific Inc., Micanopy, FL</td><td></td><td>定制组装 (352) 284-2531</td></tr><tr><td>384 孔微孔板</td><td>Greiner Bio-One</td><td>5678-1209</td><td></td></tr><tr><td>透气封板膜</td><td>Nalge Nunc international</td><td>241205</td><td></td></tr><tr><td>(5-羟基-对-萘醌)胡桃醌</td><td>Acros Organics</td><td>121640010</td><td>胡桃醌溶于 DMSO</td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-5879</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;C. elegans&lt;/em&gt; 转基因品系</td><td>作者&amp;rsquo;s 实验室</td><td>VP596</td><td>&lt;em&gt;Pgst-4::GFP 和 Pdop-3::RFP&lt;/em&gt;</td></tr></tbody></table>

使用荧光标记的 c. elegans 菌株进行高通量筛选与生物传感

High-throughput Screening and Biosensing with Fluorescent C. elegans Strains

高通量筛选（HTS）是鉴定生物过程化学调节剂的一种强大方法。然而，在基于细胞培养模型的筛选中鉴定出的许多化合物，通常在体内被发现具有毒性或药理学上无活性in vivo1-2。在整体动物模型中进行筛选有助于避免这些问题，并加速药物开发进程。
C. elegans 是一种适用于高通量筛选（HTS）的多细胞模式生物。其体型微小（&lt;1 mm），可在液体中经济地培养和分配。此外，C. elegans 也是实验操作最为便捷的动物模型之一，能够快速而详细地鉴定药物的作用机制3。
我们描述了一种用于培养和分配荧光标记的秀丽隐杆线虫（C. elegans）的实验方案，可用于化学文库的高通量筛选，或检测能够改变特定基因表达的环境污染物。大量发育同步的线虫在液体培养基中培养后，经收集、洗涤并重悬于确定密度的溶液中。随后使用蠕动泵液体分配器将线虫加入黑色平底384孔板中。化学文库中的小分子或待测样品（如水、食物或土壤）可被加入含有线虫的孔中。体内实时荧光强度通过荧光酶标仪进行测定。该方法可适用于任何在C. elegans中具有合适报告基因的可诱导基因。许多可诱导的应激和发育相关的转录通路在C. elegans中已有明确定义，并且已有大量对应的绿色荧光蛋白（GFP）转基因报告品系4。当与适当的转基因报告系统结合时，本方法可用于筛选信号通路调节剂，或开发针对环境污染物的可靠生物传感检测方法。
我们展示我们的 秀丽隐杆线虫 培养与分液方案结合我们开发的高通量筛选检测方法以监测 秀丽隐杆线虫 cap ‘n’ collar 转录因子 SKN-1。SKN-1 及其哺乳动物同源物 Nrf2 在氧化应激和异生物质应激期间激活细胞保护基因5-10Nrf2 可保护哺乳动物免受多种与年龄相关疾病（如癌症、神经退行性疾病和慢性炎症）的侵害，并已成为主要的化学治疗靶点11-13我们的检测基于一种用于SKN-1靶基因的GFP转基因报告系统 gst-414，编码谷胱甘肽-S-转移酶6。 该 gst-4 报告基因也是一种生物传感器，可用于检测激活 SKN-1 的外源性和氧化性化学物质，能够识别丙烯酰胺和甲基汞等污染物的低浓度水平15-16.

本文描述了一种基于液体培养和分配表达荧光报告蛋白的C. elegans菌株的方法，该方法无需昂贵的分选设备。该策略可应用于多种可诱导的C. elegans基因，用于药物筛选或污染物的生物传感检测。

使用荧光标记的 C. elegans 菌株进行高通量筛选与生物传感

高通量筛选（HTS）是鉴定生物过程化学调节剂的一种强大方法。然而，许多在筛选中鉴定出的化合物……

本视频演示了一种培养和分配荧光标记的秀丽隐杆线虫（CL gans）品系的方法，用于化学文库的高通量筛选或环境污染物的检测，以评估化学物质或环境因子对特定蛋白质活性的影响。在CL elgan实验中，首先制备作为线虫食物的大肠杆菌培养物，并转入表达绿色荧光蛋白（GFP）的转基因线虫，随后培养同步化的线虫。收集0.5至200万条线虫，洗涤后分装到3个84孔微孔板中，然后向线虫中加入化学文库中的小分子或待测样品（如水、食物或土壤）。最后，使用微孔板读板仪检测线虫的荧光强度。对荧光强度的数据分析可揭示能够调节可诱导转录通路的小分子，或实现对环境污染物的检测。与现有的体外和基于细胞培养的检测方法相比，该技术的主要优势在于可避免在体内具有毒性或无活性的化合物上浪费时间。这种高通量方法有助于鉴定能够调节多种可诱导通路的小分子。尽管我们开发此方法主要用于小分子文库的高通量筛选，但它也可应用于食品和环境样品中污染物的生物传感检测。本实验操作将由本实验室的技术员 Andrew Dine 和博士后 Q long 演示。请提前制备细菌蠕虫食物。首先，在500毫升的 terrific broth 中加入5毫升饱和的 e coli. OP 50 菌液，并添加50微克/毫升的链霉素。将培养物置于摇床中，在37摄氏度下过夜培养。第二天，将培养物分装到10个50毫升离心管中。然后将离心管放入冷藏离心机，以2,500 RCF离心20分钟。离心结束后，将每个细菌沉淀重悬于10毫升液体线虫生长培养基（NGM）中。将悬浮液水平振荡。使用台式振荡器振荡15分钟，以重新悬浮细菌。随后，在4°C条件下，以2,500 RCF离心20分钟。将NGM上清液倒出，称量细菌沉淀。然后加入与沉淀等体积的NGM缓冲液，通过涡旋振荡重悬沉淀。最后，将重悬的细菌培养物每份3毫升分装至15毫升离心管中，并于-20摄氏度保存，直至需要时使用。在本实验中，将以诱导应激的Xeno Duke药物对转录因子Sskn-1的影响为例进行测定。已知Sskn-1在氧化应激和异生物质应激条件下可激活细胞保护性基因。准备大规模培养携带两种荧光报告构建体的Trenchgenic c gans品系VP 5 96。VP 5 96 线虫表达 GST 四启动子驱动的 GFP，用于监测转录因子 Sskn-1 的活性，以及 DOP-3 启动子驱动的 RFP，后者用作线虫数量归一化的标准。DOP-3 是多巴胺受体的启动子，在全身的神经元中组成型表达。在本示例中，由于异源化合物强烈激活 sskn-1 并增加从 GST-4 启动子表达的 GFP 量，因此在准备培养物时，首先将 150 毫升 NNGM 缓冲液、1.5 毫升 LB、150 微升 1 摩尔胆固醇和 75 微升 100 毫克/毫升链霉素混合。添加 LB 有助于防止线虫粘附到玻璃器皿和塑料器皿上，但该用量不足以支持细菌生长。过滤混合物以达到灭菌目的，然后将其转移至无菌的一升烧瓶中，并将烧瓶放置一旁，以释放GR成虫中的卵。通过离心去除虫体上的细菌，并更换NGM培养基，直至上清液变澄清。再次用无菌水重悬虫体，进行第二次洗涤，随后离心。去除上清液，向离心管中加入 3.75 毫升无菌水。加入 1 毫升家用漂白剂和 250 微升 10 倍浓度的氢氧化钠，立即上下颠倒混匀 5 至 6 次。在蠕虫接触漂白剂处理 4 分钟后，将离心管置于旋转仪中。将试管置于体视显微镜下。大多数成虫应已死亡。在裂解发生后，剧烈振荡试管15至20次，以帮助杀死任何残留的成虫，总时长为五分钟，然后加入无菌水直至试管充满。轻轻翻转混匀5到6次以收集卵子。在500 RCF条件下离心管子1分钟。用Resus洗涤卵子3次，每次加入10毫升无菌水，涡旋振荡，离心并弃去上清液。接下来，通过加入10毫升NGM缓冲液，将100微升的卵样品稀释100倍。然后在显微镜下，用移液器将三份各5微升的等分试样点样到培养皿盖上。分别计数三个5微升等分试样中的卵数。为了估算卵子总数，将200,000至200万个卵加入含有NGM缓冲液的锥形瓶中，并在20摄氏度下以100 RPM的速度振荡培养。卵加入锥形瓶后至少16小时，使用无菌刻度移液管取出约0.5毫升悬浮的线虫培养液。用移液器吸取三滴5 µL液体，滴加到无菌培养皿盖上。将皿盖放入-20 °C冰箱中冷冻1至2分钟，以麻痹线虫。待线虫麻痹后，使用体视显微镜计数每5 µL中平均存活孵化的线虫数量，以估算总数。将之前制备的冷冻OP 50菌种置于实验台放置几分钟，使其解冻。随后，每50万条孵化的线虫加入3毫升50% OP 50。在20°C下以100 RPM转速振荡培养瓶。线虫将在约51小时内发育至L4幼虫及年轻成虫阶段。在整个培养过程中，通过肉眼观察监测细菌量。若培养基变澄清，则需添加更多细菌。使用无菌的刻度移液管将约 0.5 毫升悬浮的线虫培养物转移至标准 NGM 琼脂平板上。在体视显微镜下观察线虫，确保大多数为 L4 幼虫和年轻成虫，在明场显微镜下，L4 幼虫体中部腹侧具有一透明区域。年轻成虫体型略大，且无透明区域。接下来，将线虫培养物转移至无菌的50毫升离心管中。将离心管放入生物安全柜内的试管架上，静置以沉淀未孵化的虫卵或未发育的线虫，这些成分的沉降速度比已发育的线虫更慢。10分钟后，吸除上清液，其中含有未孵化和未发育的线虫，每份沉淀物中加入约10毫升NGM缓冲液，轻轻旋转试管以重悬线虫。将所有线虫收集至一个50毫升离心管中。在摆动桶离心机中以500 RCF离心30秒。然后将线虫重悬于50毫升含1% LB的NGM中以洗涤线虫。重复此步骤，共洗涤三至四次，以彻底去除细菌。用NGM加LB缓冲液将离心管补至50毫升。将此溶液倒入含有搅拌子的定制蠕虫分配烧瓶中，并将其置于搅拌台上。至少需要约 20 毫升或 60,000 条蠕虫，以填充分配烧瓶和分配盒中的死体积。按照之前所示方法，计数三个 5 微升液滴中的蠕虫数量。计数后，在NGM平板上加入LB培养基，每3个84孔板需准备约35,000条线虫或11.5毫升悬浮线虫，每5微升液滴中含有12至15条线虫。将10微升分配卡匣装入分配器中，并用70%乙醇预润洗进行灭菌。随后用无菌水预润洗以冲洗掉乙醇。将分配卡盒的末端插入烧瓶中，使其刚好位于搅拌子上方，且不干扰其运动。确保线虫在整个烧瓶中保持悬浮状态。将分配器程序设置为低速分配，进行两次预脉冲引液，然后运行，至少分配10毫升悬浮线虫。迅速向微孔板中加样，微孔板中应已含有待测化合物，以防止线虫在管路中沉降。此处微孔板中预先加入的待测化合物为 Glow。使用透气封板膜密封微孔板，以防止灰尘落入孔中。将平板置于恒温培养箱内的摇床上，在适合该实验的温度下进行孵育。切勿叠放平板，以免阻碍空气流通。将目标平板放入微孔板读板仪中，使用适当的发射波长和激发波长测定每孔的荧光强度。用于GFP的滤光片激发波长为485，发射波长为528。用于RFP的滤光片激发波长为540，发射波长为590。读板后，计算GFP与RFP的比值，并以不含激活化合物的对照孔读数进行归一化，以确定不同处理组间荧光强度的确切倍数差异。此处展示的SSKN单次检测使用了染色体整合的双报告系统，在该品系中，通过体视显微镜手动计数线虫。线虫数量与分配体积呈良好相关性，R平方值为0.94，p值小于0.0001。这表明，可通过调节分配体积来控制加入每孔的线虫数量。在这些图中，左图显示的每个孔的总GFP荧光强度和右图显示的每个孔的RFP荧光强度，在3个96孔板的各个孔之间均具有高度可重复性。XS表示在每个孔中测得的相对荧光强度。实线表示均值，虚线表示均值上下三个标准差的范围，所有孔的变异系数均低于9%。如本图所示，在3个96孔板共84个孔中，GST四启动子驱动的GFP荧光强度与DOP三启动子驱动的RFP荧光强度呈线性相关，R平方值为0.62，p值小于0.0001。因此，非诱导型RFP报告基因可用于标准化诱导型GFP报告基因。当表达GFP与RFP荧光的比值时，在384孔板的不同孔之间具有高度可重复性。计算GFP与RFP的比值可将变异系数降低至6%以下，表明DOP三启动子RFP报告系统具有降低变异性的能力，如本图所示。在SK N1激活型异生物质作用下，GFP相对于RFP的诱导效应在3个96孔板中均表现出强效且高度可重复的结果，所有对照组和dlo处理孔的平均相对荧光比值以实线标出。对照组均值上方三个标准差及dlo组均值下方三个标准差以虚线标出。一旦掌握，建立线虫培养物在第一天大约需要一小时进行起始操作，以及后续的收集与分装。若操作得当，处理线虫大约需要两小时。在进行该操作时，重要的是要记住起始时至少使用 60,000 条线虫，并在分装过程中始终保持其悬浮状态。在完成该流程后，可进一步开展其他筛选实验，例如针对其他可诱导通路的报告基因检测，从而开发针对其他通路的调节剂。该技术可为高通量筛选和生物传感领域的研究人员提供新途径，以快速鉴定小分子信号通路调节剂或检测环境污染物。观看本视频后，您应能够充分掌握秀丽隐杆线虫荧光品系的培养、分装及检测方法，用于可诱导转录通路的高通量筛选，或对多个样本进行环境污染物检测。

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科研

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Biology

生物学

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