Name: 测序外周血中细菌菌群:我们的经验与艾滋病毒感染者 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 50 s
Description: 了解HIV感染者外周血中细菌菌群的测序分析方法，探索微生物易位与免疫系统改变的关系。本研究通过检测细菌DNA揭示肠道菌群对HIV免疫病理的潜在影响。

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我们感谢 Gianni Scimone 在视频制作方面提供的出色帮助。

处理HIV感染的血液样本需遵循一些重要建议。 
所有血液标本必须置于坚固、防漏的容器中运输。采集标本时应小心操作，避免标本容器外部及随附文件受到污染。 
所有处理感染性血液的人员必须佩戴手套。标本处理完成后，必须更换手套并洗手。 
HIV感染的血液样本必须在II级生物安全柜中进行操作。 
应使用机械移液辅助装置。 
针头或其他锐器（包括玻璃制品，如移液管或毛细管）的使用应仅限于无其他替代方法的情况。 
发生血液溢洒后，以及工作结束时，实验室台面必须使用适当的化学消毒剂进行去污染处理。 
使用过的污染材料在重复使用前必须去污染，或通过医疗废物途径正确处置。 
任何职业性接触潜在感染性血液或体液的事件（即需要采取普遍预防措施的情况）均应视为医疗紧急情况，必须及时采取干预措施以确保有效性。 
该方案的完成需要5天时间。具体时间安排详见图1。 
细菌种类的鉴定采用图2中所述的方法。

1. 样品采集
<ol>
 <li>采集9 ml全血至含EDTA的试管中。</li>
 <li>试管在室温下以2000 rpm离心10分钟，以获取血浆。</li>
 <li>将血浆收集至无菌的2 ml Eppendorf管中。</li>
</ol>
2. 血浆样本中DNA的提取
<ol>
 <li>对超净台、移液器及实验所需材料进行充分消毒，以确保无菌环境。</li>
 <li>将所有材料置于紫外灯下照射至少30分钟。</li>
 <li>使用消毒剂擦拭手套。</li>
 <li>将几张纸巾浸入乙醇后放置于超净台内，每次丢弃枪头时，均需将移液器在湿润的纸巾上擦拭。</li>
</ol>
使用商品化试剂盒按照制造商说明书提取DNA（Easy-DNA试剂盒，Invitrogen，Carlsbad CA，USA）。
<ol start="5">
 <li>将 350 μL 血浆置于无菌的 2 ml 离心管中。</li>
 <li>使用 350 μL 过滤的超纯水作为阴性对照。</li>
 <li>向样品中加入 10 μL 溶菌酶（1 mg/ml）。</li>
 <li>在 37°C 下孵育 30 分钟。</li>
 <li>向样品中加入 500 μL 裂解液，并轻轻混匀。</li>
 <li>在 65°C 下孵育 7 分钟。</li>
 <li>向样品中加入 900 μL 氯仿。</li>
 <li>剧烈涡旋振荡，直至样品呈现均匀的黏稠状态。</li>
 <li>加入 200 μL 沉淀液，并剧烈涡旋振荡。</li>
 <li>在室温下以 10500 rpm 离心 10 分钟，使相分离并形成界面。</li>
 <li>将上层水相转移至含有 1 ml 100% 乙醇的新鲜微量离心管中。</li>
 <li>在 4°C 下以 10500 rpm 离心 10 分钟。</li>
 <li>去除乙醇。</li>
 <li>加入 1 ml 70% 乙醇。</li>
 <li>在 4°C 下以最大转速离心 10 分钟。</li>
 <li>去除乙醇，残留的乙醇应用移液器彻底吸除。</li>
 <li>将沉淀物重悬于 50 μL 超纯水中。</li>
 <li>使用分光光度计测定 DNA 浓度。</li>
</ol>
3. 16S rRNA 基因 PCR
 PCR 扩增按先前所述方法进行9。
<ol>
 <li>在100 μL反应体系中扩增DNA，反应体系包含10 μL 10X PCR缓冲液、5 μL 25 mM MgCl2、5 μL 2 mM总dNTPs、1 μL 50 μM引物RW01（AACTGGAGGAAGGTGGGGAT）、1 μL 50 μM引物DG74（AGGAGGTGATCCAACCGCA）、34 μL H2O和0.5 μL Taq聚合酶（AmpliTaq Gold, Applied Biosystem, Foster City, CA, USA）。</li>
 <li>将PCR混合液转移至滤器中，以避免细菌Taq聚合酶可能造成的污染。</li>
 <li>将滤器（Microcon, Millipore, Billerica, MA, USA）在4°C下以500 rcf离心30分钟。</li>
 <li>根据需要扩增的样本数量（阳性与阴性PCR对照、样本及提取用水）分装PCR混合液。</li>
 <li>采用以下热循环条件：94°C预变性10分钟；94°C、55°C和72°C各1分钟，共40个循环；最后72°C延伸10分钟。</li>
 <li>在2%琼脂糖凝胶上检测PCR产物，使用100 bp DNA Marker，PCR产物大小约为360 bp（图3）。</li>
</ol>
4. PCR 产物纯化
仅应纯化PCR检测呈阳性的样本。纯化步骤使用商业试剂盒并按照制造商说明书进行（PureLink PCR microkit，Invitrogen，Carlsbad CA，USA）。 
<ol>
 <li>每1体积PCR产物加入4体积含异丙醇的结合缓冲液。</li>
 <li>将含结合缓冲液的PCR产物转移至离心柱中。</li>
 <li>室温下以10000 rcf离心1分钟。</li>
 <li>用含乙醇的洗涤缓冲液洗涤离心柱。</li>
 <li>室温下以10000 rcf离心1分钟。</li>
 <li>室温下以最大转速离心1分钟，以干燥硅胶膜并彻底去除残留的含乙醇洗涤缓冲液。</li>
 <li>加入10 μL超纯水。</li>
 <li>室温孵育1分钟。</li>
 <li>室温下以最大转速离心2分钟，收集纯化的DNA。</li>
</ol>
5. 克隆
LB 培养基平板的制备
<ol>
 <li>将25克LB培养基粉末溶解于约800毫升水中。</li>
 <li>加水定容至1升。</li>
 <li>加入15克Bacto琼脂。</li>
 <li>高压灭菌20分钟。</li>
 <li>灭菌后，用力摇动烧瓶中的溶液，使琼脂充分混匀。</li>
 <li>将溶液冷却至50°C。</li>
 <li>加入氨苄青霉素（50 μg/ml），摇动至完全溶解。</li>
 <li>倒平板，琼脂厚度约为3毫米。</li>
 <li>将平板置于室温下晾干。</li>
 <li>在每块LB平板表面均匀涂布X-Gal（40 mg/ml）和IPTG（100 mM），于37°C孵育至可使用状态。</li>
</ol>
感受态细胞转化
转化采用商业试剂盒并按照制造商说明书进行（Topo TA 克隆试剂盒，Invitrogen，Carlsbad CA，USA）。
<ol>
 <li>准备连接反应体系（1–4 μL 新鲜 PCR 产物、1 μL 盐溶液、1 μL 载体，必要时加水）。</li>
 <li>轻轻混匀反应体系，在室温下孵育 5–10 分钟。</li>
 <li>将反应体系置于冰上。</li>
 <li>取 2 μL 连接反应产物加入感受态细胞小管中，轻轻混匀。</li>
 <li>在冰上孵育 30 分钟。</li>
 <li>在 42°C 下热激 30 秒。</li>
 <li>立即将小管转移至冰上。</li>
 <li>加入 250 μL 培养基。</li>
 <li>盖紧管盖，在 37°C 下水平摇动培养 1 小时。</li>
 <li>取每种转化产物 50 μL 涂布于预热的选择性平板上。</li>
 <li>在 37°C 下过夜培养。</li>
</ol>
孵育后，平板上会形成白色和蓝色菌落。白色菌落表示含有PCR产物插入，蓝色菌落表示无PCR产物插入。
6. 测序分析
测序反应
<ol>
 <li>使用以下试剂配制混合液：2,5 μl DNA，1 μl 引物（5pmol/μl），1,1 μl BigDye（Applied Biosystem, Foster City, CA, USA）。</li>
 <li>热循环仪反应条件：96°C 预变性 1 分钟；96°C 变性 10 秒、55°C 退火 15 秒、60°C 延伸 4 分钟，共 25 个循环。</li>
</ol>
柱纯化
<ol>
 <li>每个反应准备一个 MicroSpin 柱（Qiagen，Milan，意大利）。</li>
 <li>倒置柱子并涡旋震荡以混匀树脂。</li>
 <li>折断柱子底部，将盖子松开 ¼ 圈，并将柱子放入一个微量离心管中。</li>
 <li>以 3200 rpm 离心 1 分钟。</li>
 <li>将柱子转移至一个新的洁净微量离心管中。</li>
 <li>小心地将整个 PCR 测序反应液用移液器加入柱子中心。</li>
 <li>以 3200 rpm 离心 1 分钟。</li>
 <li>纯化的 DNA 将被洗脱至管中（20 μl 超纯水）。</li>
</ol>
测序分析
<ol>
 <li>将纯化后的样品（20 μl）加入96孔板中。</li>
 <li>将板放入测序仪中。自动DNA测序仪会生成四色色谱图，显示测序运行的结果。</li>
 <li>将核苷酸序列作为查询序列比对公共序列数据库。该搜索在NCBI数据库和服务器上通过基本局部比对搜索工具（BLAST）进行。</li>
 <li>仅考虑同源性为98-100%的细菌。</li>
</ol>
7. 代表性结果
<img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig1.jpg" alt="分子克隆时间线：DNA提取、PCR、克隆、孵育、测序。流程示意图。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 
 图1. 实验流程时间线。
<img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig2.jpg" alt="DNA提取与克隆的工作流程；示意图显示从血液采集到BLAST分析的各个步骤。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="Figure 2"> 
 图2. 整个细菌鉴定流程的流程图。
<img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig3.jpg" alt="凝胶电泳结果，显示300 bp和400 bp处的DNA条带，表明片段大小分离。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 
 图3. 2%琼脂糖凝胶显示广谱16S rRNA基因PCR产物。第1道为100 bp DNA Marker，第2道为PCR阳性对照，第3道为PCR阴性对照。第4道显示来自一名HIV阳性患者的样本，第5道为水对照。第6道显示来自一名健康个体的样本及阴性PCR反应；第7道为水对照。仅HIV阳性患者显示出阳性PCR扩增。在提取步骤中使用超纯水作为阴性对照，表明未发生污染。
<img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig4.jpg" alt="DNA电泳凝胶；分子量标记；含DNA条带的泳道；基因分析结果。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图4"> 
 图4. 0.7%琼脂糖凝胶，显示通过质粒小提程序提取的质粒。第1泳道含有1千碱基DNA Ladder，第2泳道为蓝色对照菌落，第3至第12泳道为白色菌落。来自蓝色菌落的质粒不含PCR产物插入片段，全部10个白色菌落均含有带正确插入片段的质粒。
<img src="/files/ftp_upload/2830/2830fig5.jpg" alt="细菌种类鉴定图表；菌落类型、种类及100%同源性结果。" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图5"> 
 图5. 显示了一例HIV阳性个体血浆中细菌测序分析的结果。我们的结果表明，HIV疾病中的微生物易位涉及多种微生物菌群，而在HIV阴性个体中未观察到该现象，提示肠道免疫在控制细菌易位方面存在显著功能障碍。

<ol><li>Hooper, L. V., Macpherson, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immune+adaptations+that+maintain+homeostasis+with+the+intestinal+microbiota%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immune adaptations that maintain homeostasis with the intestinal microbiota.</a> Nat Rev Immunol. 10, 159-169 (2010).</li>
<li>Macpherson, A. J., Harris, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+between+commensal+intestinal+bacteria+and+the+immune+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Interactions between commensal intestinal bacteria and the immune system.</a> Nat Rev Immunol. 4, 478-485 (2004).</li>
<li>Kanauchi, O., Mitsuyama, K., Araki, Y., Andoh, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modification+of+intestinal+flora+in+the+treatment+of+inflammatory+bowel+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Pharm+Des%22%5BJournal%5D)">Modification of intestinal flora in the treatment of inflammatory bowel disease.</a> Curr Pharm Des. 9, 333-346 (2003).</li>
<li>Brenchley, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+translocation+is+a+cause+of+systemic+immune+activation+in+chronic+HIV+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Microbial translocation is a cause of systemic immune activation in chronic HIV infection.</a> Nat Med. 12, 1365-1371 (2006).</li>
<li>Brenchley, J. M., Price, D. A., Douek, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((HIV+disease%3A+fallout+from+a+mucosal+catastrophe%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Immunol%22%5BJournal%5D)">HIV disease: fallout from a mucosal catastrophe.</a> Nat Immunol. 7, 235-239 (2006).</li>
<li>Jiang, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+levels+of+bacterial+DNA+correlate+with+immune+activation+and+the+magnitude+of+immune+restoration+in+persons+with+antiretroviral-treated+HIV+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J+Infect+Dis%22%5BJournal%5D)">Plasma levels of bacterial DNA correlate with immune activation and the magnitude of immune restoration in persons with antiretroviral-treated HIV infection.</a> J Infect Dis. 199, 1177-1185 (2009).</li>
<li>Marchetti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+translocation+is+associated+with+sustained+failure+in+CD4%2B+T-cell+reconstitution+in+HIV-infected+patients+on+long-term+highly+active+antiretroviral+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22AIDS%22%5BJournal%5D)">Microbial translocation is associated with sustained failure in CD4+ T-cell reconstitution in HIV-infected patients on long-term highly active antiretroviral therapy.</a> AIDS. 22, 2035-2038 (2008).</li>
<li>Marchetti, G. Role of Microbial Translocation and Immune Hyperactivation in Disease Progression of HIV+ Patients with Preserved CD4 Count in the Absence of ART. The 17th Conference on Reteroviruses and Opportunistic Infections (CROI), San Francisco, CA, USA, , (2010).</li>
<li>Greisen, K., Loeffelholz, M., Purohit, A., Leong, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PCR+primers+and+probes+for+the+16S+rRNA+gene+of+most+species+of+pathogenic+bacteria%2C+including+bacteria+found+in+cerebrospinal+fluid%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Microbiol%22%5BJournal%5D)">PCR primers and probes for the 16S rRNA gene of most species of pathogenic bacteria, including bacteria found in cerebrospinal fluid.</a> J Clin Microbiol. 32, 335-351 (1994).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

本文展示了一种PCR/测序方案，用于表征HIV感染者外周血中细菌的移位情况。
使用含EDTA试管采集的血浆可获得最可靠的结果。采血后，应在2至3小时内通过离心分离血浆，以避免溶血和DNA片段降解。样本首先在-20°C下保存约5天，随后转移至-80°C保存。应避免反复冻融，以免导致细菌DNA损失。
血浆样本应在解冻后12小时内使用。
为了从供体的外周血中获得最大量的DNA，对DNA提取方案进行了优化。具体而言，使用血浆而非全血，因为全血中含有少量细菌DNA，且这些细菌DNA会被来自外周血细胞的大量DNA所掩盖。
我们有意将具有急性感染体征和/或症状的受试者排除在本研究之外。然而，考虑到与 HIV 相关的免疫抑制患者存在胃肠屏障功能受损及细菌产物易位现象，我们无法排除整个微生物的易位可能性。因此使用溶菌酶的理论依据在于：由于该酶可破坏细菌细胞壁，其使用能够促使极少量循环微生物释放细菌 DNA，而这些微生物的数量未必足以...

<table><tbody><tr><td>Easty-DNA 试剂盒</td><td>Invitrogen</td><td>K 180001</td><td></td></tr><tr><td>氯仿</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C2432</td><td></td></tr><tr><td>乙醇</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E7203</td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>UltraPure 水</td><td>Invitrogen</td><td>10977049</td><td></td></tr><tr><td>溶菌酶</td><td>Fluka</td><td>62970</td><td>10 &amp;#x03BC;g/mL 蒸馏水中</td></tr><tr><td>AmpliTaq Gold</td><td>Applied Biosystems</td><td>26478701</td><td></td></tr><tr><td>Microcon 100</td><td>EMD Millipore</td><td>42413</td><td></td></tr><tr><td>PCR 引物</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>琼脂糖</td><td>Eppendorf</td><td>C1343</td><td></td></tr><tr><td>DNA Marker</td><td>Invitrogen</td><td>15628019</td><td></td></tr><tr><td>Purelink PCR 微量纯化试剂盒</td><td>Invitrogen</td><td>K310050</td><td></td></tr><tr><td>LB 琼脂粉</td><td>Invitrogen</td><td>22700025</td><td></td></tr><tr><td>Bactoagar</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>氨苄青霉素</td><td>Invitrogen</td><td>11593027</td><td>10 mg/mL 蒸馏水中</td></tr><tr><td>X-gal</td><td>Invitrogen</td><td>15520034</td><td>40 mg/mL DMF 中</td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Invitrogen</td><td>15529019</td><td>100 mM 蒸馏水中</td></tr><tr><td>Topo TA 克隆试剂盒</td><td>Invitrogen</td><td>K450002</td><td></td></tr><tr><td>Purelink Quick Plasmid Miniprep 试剂盒</td><td>Invitrogen</td><td>K210010</td><td></td></tr><tr><td>Big dye</td><td>Applied Biosystems</td><td>4337455</td><td></td></tr><tr><td>DyeEx 2.0 离心柱试剂盒</td><td>Qiagen</td><td>63204</td><td></td></tr></tbody></table>

外周血中细菌微生物群的测序：我们在hiv感染者中的经验

Sequencing of Bacterial Microflora in Peripheral Blood: our Experience with HIV-infected Patients

健康的胃肠道在生理状态下定植有大量共生微生物，这些微生物影响着体液和细胞黏膜免疫系统的发育1,2。
 肠道菌群通过强大的黏膜屏障受到免疫系统的保护。已知感染和抗生素会改变正常的胃肠道屏障以及定植菌群的组成，这可能导致潜在的免疫异常3。
HIV 会导致胃肠道屏障受损，伴随黏膜免疫功能进行性衰竭，以及细菌生物产物（如脂多糖和细菌 DNA 片段）漏入全身循环，从而引发全身性免疫激活4-7。微生物易位参与了 HIV/AIDS 的免疫病理发生过程以及对治疗的反应4,8。
我们旨在表征 HIV 感染患者外周血中易位细菌的组成。为实现这一目标，我们建立了一种针对泛细菌 16S 核糖体基因的 PCR 反应，随后进行测序分析。
简而言之，使用来自HIV感染患者和健康受试者的全血。由于健康个体具有正常的肠道稳态，因此在这些患者中不应出现微生物群的易位。通过静脉穿刺采集全血并分离血浆后，从血浆中提取DNA，并用于进行针对泛细菌16S核糖体基因的广谱PCR反应9。PCR产物经纯化后，进行克隆和测序分析。

本实验将展示如何对艾滋病病毒阳性患者外周血中易位的细菌种类进行测序分析。

外周血中细菌微生物群的测序：我们在HIV感染者中的经验

健康的胃肠道在生理状态下定植有多种多样的共生微生物，这些微生物影响体液免疫的发育……

对易位至外周血的细菌微生物组进行测序。我们针对HIV感染患者的研究经验，我是Marti，任职于意大利米兰大学传染病与热带医学临床诊所的助理教授。接下来，我们将向您展示如何从HIV感染患者的外周血中检测并测序细菌DNA的实验过程。健康的胃肠道定植着多种多样的共生微生物，这些微生物影响体液和细胞免疫系统的发育。在感染、抗生素治疗、术后并发症以及癌症、胰腺炎和营养不良患者等若干临床情况下，微生物群通过强大的黏膜屏障与免疫系统隔离。胃肠道会发生改变。HIV 感染会导致胃肠道屏障受损，黏膜免疫功能进行性下降，并使细菌生物产物（如脂多糖和细菌 DNA 片段）渗漏进入全身循环，从而导致全身性免疫激活。本实验旨在检测并测序 HIV 感染患者外周血中存在的细菌 DNA。参与该实验的人员包括：来自米兰大学传染病与热带医学科的传染病专科医师 Camilla ti、博士研究生 Esther me 以及博士后研究员 ju MariaI。本实验的目标是鉴定 HIV 感染患者外周血样本中的细菌种类。我们将使用来自 HIV 感染者和健康受试者的全血，因为健康个体具有正常的肠道稳态，预计在这些患者中不会观察到易位的微生物群。将从患者体内采集全血，随后进行血浆分离。随后将提取DNA，以针对PCIC 16S核糖体基因进行广谱PCR反应。在PCR产物获得后，将进行纯化、克隆及测序分析。本实验的第一步是通过静脉穿刺采集血液，随后进行血浆分离。采集约九毫升全血至含EDTA的试管中。将试管置于离心机中，以2000转/分钟离心10分钟。在室温下离心可实现血浆的分离。现在将从我们的血浆样本中提取 DNA。充分消毒超净台、移液器及实验所需材料，以确保无菌环境，并将所有物品置于紫外灯下照射至少 30 分钟。关闭紫外灯后，用消毒剂擦拭手套，将几张纸巾浸入乙醇中并放置在超净台内，每次丢弃枪头时都应更换。在 DNA 提取过程中，每次使用移液器后均需在湿润的纸巾上擦拭移液器。现在可以进行DNA提取。使用商业试剂盒提取DNA，并遵循制造商的说明。简而言之，将350微升血浆加入一个2毫升的离心管中。使用超纯水作为阴性对照。向样品中加入10微升溶酶体，终浓度为每毫升1毫克。样品随后孵育30分钟。在37摄氏度下，根据离心后的说明，将溶液A、氯仿和溶液B加入样品中。此时会出现三个 distinct 相。收集上清液并加入乙醇沉淀，以实现DNA沉淀，随后使用分光光度计测定DNA浓度。下一步是针对PRIC 16S核糖体基因进行广泛范围的PCR扩增反应，该PCR在专用房间内进行。使用以下试剂配制PCR反应混合液。为避免细菌Taq DNA聚合酶可能造成的污染，PCR混合液需在4°C条件下以500 ×g离心过滤30分钟。然后将PCR反应液分装成若干份，具体份数根据需要扩增的样本数量而定。注意需预留用于阴性对照和阳性对照反应的分装量。程序化设置热循环条件如下：94°C 预变性5分钟；随后进行40个循环，每个循环包括94°C 变性1分钟、55°C 退火1分钟、72°C 延伸1分钟；最后72°C 终延伸10分钟。平均总时长为3小时。PCR产物在2%琼脂糖凝胶上进行可视化。此图显示的是PCR产物在2%琼脂糖凝胶上的结果。第一泳道含有100 bp DNA标记物。第二泳道为 PCR 阳性对照。第三泳道包含 PCR 阴性对照。第四泳道显示来自 HIV 阳性患者的样本，第五泳道为水对照泳道。第六泳道显示来自健康个体的样本和阴性PCR反应。第七泳道含有水。下一步是PCR扩增。使用商业试剂盒纯化PCR产物，具体操作遵循生产商说明书。此步骤中使用多种带有滤膜的离心柱。PCR结果记录在工作记录表上。接下来，我们将使用蓝白斑筛选法进行克隆。这是一种分子生物学技术，可用于检测DNA是否成功插入载体中。随后将载体转化至感受态细胞中的细菌内。将感受态细胞在含有xal的培养基中培养。如果转化成功，细菌菌落将呈现白色；如果未成功，菌落则呈现蓝色。Xal 用于指示细胞是否表达β-半乳糖苷酶，并用于可视化大肠杆菌菌落的转化情况，IPTG 可诱导β-半乳糖苷酶的表达。将 Xal 和 IPTG 涂布于含氨苄青霉素的平板上。按照生产商说明书，制备包含 PCR 产物、SALT 和克隆载体的克隆混合液。将大肠杆菌细胞置于冰上。然后将连接反应混合物加入细胞中，经过热激处理后，将平板在37摄氏度下过夜培养。培养后，平板上会形成白色和蓝色的菌落。白色菌落表示PCR产物阳性。有插入片段的菌落为蓝色，表示PCR产物插入阴性。选取10个白色菌落和1个蓝色菌落。每个菌落接种于2 mL液体LB培养基中，加入氨苄青霉素后，菌落在37摄氏度下过夜培养。培养过夜后，取菌落用于质粒提取，采用商业化的小量提取试剂盒进行操作。含有滤膜的小型柱子用于质粒提取后的步骤。提取的质粒在0.7% AROS凝胶上进行可视化。此图显示的是0.7% AROS凝胶上的小量制备产物。第一泳道含有1 kb DNA ladder。第二泳道包含蓝色对照菌落，第三至第十二泳道包含白色菌落。结果记录于工作表中，随后进行测序步骤，质粒被扩增。使用这些试剂制备混合液。根据需要扩增的样本数量，将PCR混合液分装成若干等份。热循环程序设置如下：96°C 预变性1分钟，随后进行循环反应：96°C 变性10秒，50°C 退火5秒，60°C 延伸4分钟。共25个循环。平均持续时间约为一小时。扩增完成后，使用含过滤柱的试剂盒纯化PCR产物。将纯化后的产物加入到一块板中，然后将该板放入测序仪。获得测序结果后，将其提交至BLAST进行比对，从而鉴定各菌落的细菌种类。若菌落的序列同源性达到98%至100%，则视为阳性。这是一例来自一名HIV阳性个体血浆的细菌测序结果。我们的研究结果表明，HIV疾病中的微生物易位涉及多种微生物菌群。我们已证实，HIV感染患者在全身循环中存在高度多样的微生物菌群。对于HIV阴性的健康个体，外周血中的细菌DNA低于检测限，这可能反映了胃肠道屏障的完整性。目前我们的研究重点是探讨和分析外周血中微生物群可能在条件化、HIV免疫病理发生过程以及可能的治疗反应中所起的作用。

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Research

科研

JoVE Journal

Medicine

医学

测序外周血中细菌菌群：我们的经验与艾滋病毒感染者

HIV嗜性可根据病毒包膜的V3区推断。使用巢式RT-PCR对V3区进行三重PCR扩增，随后进行测序，并利用生物信息学软件进行分析。若样本中存在一个或多个序列的g2P评分较低，则被归类为非R5病毒。...

基于V3区群体测序进行HIV-1嗜性基因型推断

我们已经开发出一种 体外 疟疾-HIV-1 共感染模型用于研究其影响 恶性疟原虫...

一种用于研究人类原代单核细胞来源免疫细胞中Plasmodium falciparum与HIV-1相互作用的体外共感染模型

以囊性纤维化气道为例，该论文提出了一套综合性的实验流程，结合宏基因组学和宏转录组学方法，用于表征与动物相关的样本中的微生物和病毒群落。...

纯化不纯：从复杂的动物相关样本中测序宏基因组和宏转录组

人类共感染难以复制 体外然而，人类疟原虫可被轻易地进行体外培养 体外，新鲜分离的自然感染HIV的人类外周血单个核细胞亦可如此。这为研究HIV共感染背景下疟原虫的早期免疫应答提供了一个极佳的模型。...

一个 体外 HIV共感染背景下测量疟疾免疫反应的模型

本文描述了一种利用梯度方法分离外泌体与人类免疫缺陷病毒（HIV）颗粒的技术。该方法用于从HIV感染者的人体血浆中将外泌体与HIV颗粒分离。随后对分离得到的外泌体进行了细胞因子/趋化因子含量分析。...

从HIV-1阳性个体血浆中分离外泌体

人类组织感染人类免疫缺陷病毒（HIV） 离体...

离体人淋巴组织和女性生殖道黏膜中的人免疫缺陷病毒1型感染与组织培养

全长单个前病毒测序（FLIPS）是一种高效、高通量的方法，可用于扩增和测序单个接近全长的（完整和有缺陷的）HIV-1前病毒，并可评估其潜在的复制能力。FLIPS克服了以往用于测序潜伏HIV-1储存库的检测方法的局限性。...

用于下一代测序的近全长HIV-1前病毒扩增

我们描述了一种处理接受抗逆转录病毒治疗的慢性HIV感染者支气管肺泡灌洗液及其配对的外周血的方法，以评估肺部HIV储存库。这些方法可获得高纯度的CD4 T细胞和肺泡巨噬细胞，随后可用于通过超敏聚合酶链式反应进行免疫表型分析以及HIV...

支气管肺泡灌洗液及配对血液样本中肺泡巨噬细胞和CD4+ T细胞免疫表型分析与HIV储存库评估的处理方法

本文介绍了一种优化的实验方案，用于从HIV感染者和健康对照个体中分离、培养、转染并诱导人原代单核细胞分化。...

原代人单核细胞的分离、转染与培养

母乳可传播人类免疫缺陷病毒（HIV），但仅有约15%的HIV感染母亲所哺乳的婴儿会因此感染。哺乳婴儿每日摄入约105−108个母源白细胞，然而这些细胞的研究尚不充分。本文介绍了从母乳中分离白细胞的方法，并对其吞噬能力进行了分析。...

从人乳汁中分离白细胞用于针对HIV靶标的抗体依赖性细胞吞噬作用检测

了解HIV感染者外周血中细菌菌群的测序分析方法，探索微生物易位与免疫系统改变的关系。本研究通过检测细菌DNA揭示肠道菌群对HIV免疫病理的潜在影响。

外周血中细菌微生物群的测序：我们在HIV感染者中的经验

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