2011年6月11日
本实验将展示如何对艾滋病病毒阳性患者外周血中易位的细菌种类进行测序分析。
对易位至外周血的细菌微生物组进行测序。我们针对HIV感染患者的研究经验,我是Marti,任职于意大利米兰大学传染病与热带医学临床诊所的助理教授。接下来,我们将向您展示如何从HIV感染患者的外周血中检测并测序细菌DNA的实验过程。
健康的胃肠道定植着多种多样的共生微生物,这些微生物影响体液和细胞免疫系统的发育。在感染、抗生素治疗、术后并发症以及癌症、胰腺炎和营养不良患者等若干临床情况下,微生物群通过强大的黏膜屏障与免疫系统隔离。胃肠道会发生改变。
HIV 感染会导致胃肠道屏障受损,黏膜免疫功能进行性下降,并使细菌生物产物(如脂多糖和细菌 DNA 片段)渗漏进入全身循环,从而导致全身性免疫激活。本实验旨在检测并测序 HIV 感染患者外周血中存在的细菌 DNA。参与该实验的人员包括:来自米兰大学传染病与热带医学科的传染病专科医师 Camilla ti、博士研究生 Esther me 以及博士后研究员 ju MariaI。本实验的目标是鉴定 HIV 感染患者外周血样本中的细菌种类。
我们将使用来自 HIV 感染者和健康受试者的全血,因为健康个体具有正常的肠道稳态,预计在这些患者中不会观察到易位的微生物群。将从患者体内采集全血,随后进行血浆分离。
随后将提取DNA,以针对PCIC 16S核糖体基因进行广谱PCR反应。在PCR产物获得后,将进行纯化、克隆及测序分析。本实验的第一步是通过静脉穿刺采集血液,随后进行血浆分离。
采集约九毫升全血至含EDTA的试管中。将试管置于离心机中,以2000转/分钟离心10分钟。在室温下离心可实现血浆的分离。
现在将从我们的血浆样本中提取 DNA。充分消毒超净台、移液器及实验所需材料,以确保无菌环境,并将所有物品置于紫外灯下照射至少 30 分钟。关闭紫外灯后,用消毒剂擦拭手套,将几张纸巾浸入乙醇中并放置在超净台内,每次丢弃枪头时都应更换。在 DNA 提取过程中,每次使用移液器后均需在湿润的纸巾上擦拭移液器。
现在可以进行DNA提取。使用商业试剂盒提取DNA,并遵循制造商的说明。简而言之,将350微升血浆加入一个2毫升的离心管中。
使用超纯水作为阴性对照。向样品中加入10微升溶酶体,终浓度为每毫升1毫克。样品随后孵育30分钟。
在37摄氏度下,根据离心后的说明,将溶液A、氯仿和溶液B加入样品中。此时会出现三个 distinct 相。收集上清液并加入乙醇沉淀,以实现DNA沉淀,随后使用分光光度计测定DNA浓度。
下一步是针对PRIC 16S核糖体基因进行广泛范围的PCR扩增反应,该PCR在专用房间内进行。使用以下试剂配制PCR反应混合液。为避免细菌Taq DNA聚合酶可能造成的污染,PCR混合液需在4°C条件下以500 ×g离心过滤30分钟。
然后将PCR反应液分装成若干份,具体份数根据需要扩增的样本数量而定。注意需预留用于阴性对照和阳性对照反应的分装量。
程序化设置热循环条件如下:94°C 预变性5分钟;随后进行40个循环,每个循环包括94°C 变性1分钟、55°C 退火1分钟、72°C 延伸1分钟;最后72°C 终延伸10分钟。平均总时长为3小时。
PCR产物在2%琼脂糖凝胶上进行可视化。此图显示的是PCR产物在2%琼脂糖凝胶上的结果。第一泳道含有100 bp DNA标记物。
第二泳道为 PCR 阳性对照。第三泳道包含 PCR 阴性对照。第四泳道显示来自 HIV 阳性患者的样本,第五泳道为水对照泳道。
第六泳道显示来自健康个体的样本和阴性PCR反应。第七泳道含有水。下一步是PCR扩增。
使用商业试剂盒纯化PCR产物,具体操作遵循生产商说明书。此步骤中使用多种带有滤膜的离心柱。PCR结果记录在工作记录表上。
接下来,我们将使用蓝白斑筛选法进行克隆。这是一种分子生物学技术,可用于检测DNA是否成功插入载体中。随后将载体转化至感受态细胞中的细菌内。
将感受态细胞在含有xal的培养基中培养。如果转化成功,细菌菌落将呈现白色;如果未成功,菌落则呈现蓝色。
Xal 用于指示细胞是否表达β-半乳糖苷酶,并用于可视化大肠杆菌菌落的转化情况,IPTG 可诱导β-半乳糖苷酶的表达。将 Xal 和 IPTG 涂布于含氨苄青霉素的平板上。按照生产商说明书,制备包含 PCR 产物、SALT 和克隆载体的克隆混合液。
将大肠杆菌细胞置于冰上。然后将连接反应混合物加入细胞中,经过热激处理后,将平板在37摄氏度下过夜培养。培养后,平板上会形成白色和蓝色的菌落。
白色菌落表示PCR产物阳性。有插入片段的菌落为蓝色,表示PCR产物插入阴性。选取10个白色菌落和1个蓝色菌落。
每个菌落接种于2 mL液体LB培养基中,加入氨苄青霉素后,菌落在37摄氏度下过夜培养。培养过夜后,取菌落用于质粒提取,采用商业化的小量提取试剂盒进行操作。
含有滤膜的小型柱子用于质粒提取后的步骤。提取的质粒在0.7% AROS凝胶上进行可视化。此图显示的是0.7% AROS凝胶上的小量制备产物。第一泳道含有1 kb DNA ladder。
第二泳道包含蓝色对照菌落,第三至第十二泳道包含白色菌落。结果记录于工作表中,随后进行测序步骤,质粒被扩增。
使用这些试剂制备混合液。根据需要扩增的样本数量,将PCR混合液分装成若干等份。热循环程序设置如下:96°C 预变性1分钟,随后进行循环反应:96°C 变性10秒,50°C 退火5秒,60°C 延伸4分钟。
共25个循环。平均持续时间约为一小时。扩增完成后,使用含过滤柱的试剂盒纯化PCR产物。
将纯化后的产物加入到一块板中,然后将该板放入测序仪。获得测序结果后,将其提交至BLAST进行比对,从而鉴定各菌落的细菌种类。若菌落的序列同源性达到98%至100%,则视为阳性。
这是一例来自一名HIV阳性个体血浆的细菌测序结果。我们的研究结果表明,HIV疾病中的微生物易位涉及多种微生物菌群。我们已证实,HIV感染患者在全身循环中存在高度多样的微生物菌群。
对于HIV阴性的健康个体,外周血中的细菌DNA低于检测限,这可能反映了胃肠道屏障的完整性。目前我们的研究重点是探讨和分析外周血中微生物群可能在条件化、HIV免疫病理发生过程以及可能的治疗反应中所起的作用。
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本研究展示了对艾滋病病毒阳性患者外周血中易位细菌物种的测序分析。该研究强调了微生物群对免疫系统的影响,以及其在多种临床状况下发生改变所引发的潜在意义。
对外周血中细菌微群进行测序,可直接评估HIV感染患者中微生物易位及其免疫学后果。该方法为传染病研究流程中的靶点验证和机制性风险降低提供了可操作的见解。该技术在宿主-微生物相互作用与全身性免疫激活的交汇点上提供预测信心,有助于转化医学和临床前研发中的项目组合决策。
该测序工作流程通过实现对系统循环中微生物DNA的直接检测,连接了早期发现与转化研究,支持传染病研究 pipeline 中的假设验证和生物标志物开发。