2011年7月23日
卵母细胞在减数分裂成熟过程中由于染色体分离错误而容易发生非整倍性。非整倍体卵子可导致不孕、流产或唐氏综合征等发育障碍。本文介绍了将目标物质导入卵母细胞的方法,以及研究减数分裂成熟过程和评估倍性的方法。
本实验的总体目标是评估经过实验干预后,处于第二次减数分裂中期的卵母细胞的极体排放情况。首先,从性成熟雌性小鼠体内获取完全发育的卵母细胞。随后,将所选材料显微注射至卵母细胞中,以干扰目标蛋白,接着将卵母细胞体外培养至减数分裂第二次分裂的中期。接下来,通过使用mantro处理,诱导卵母细胞发生染色体铺展,从而形成单极纺锤体。
最终,这些结果可以通过免疫荧光和共聚焦显微镜描绘卵子的多倍体状态。该方法有助于回答生殖生物学和染色体分离领域中的关键问题,例如理解导致卵子异常的分子机制。该方法的可视化演示至关重要,因为显微注射技术难以掌握,其多个操作步骤仅通过文字难以准确传达。对性成熟雌性小鼠腹腔注射 5 IU 的孕马血清促性腺激素,以最大化每只小鼠所分离的窦状卵泡数量。
在PMSG预处理后约48小时,将每只小鼠3毫升收集培养基于37摄氏度预热并平衡。将1毫升培养基放置至少1小时。在培养皿中分别制备微滴,并用矿物油覆盖。
现在将培养基培养皿放入培养箱,将收集液培养皿置于载片加热器上。处死小鼠,解剖取出卵巢并放入含有预热收集液的表面皿中。
使用1毫升胰岛素注射器,用固定在一起的27号针头多次穿刺,将卵巢固定在培养皿上并释放窦状卵泡。在解剖显微镜下,用口控玻璃移液器收集卵丘细胞复合体。仅收集大的窦状卵泡,而不收集较小的前窦状卵泡或裸卵母细胞。
用略大于卵母细胞直径的小移液管,将复合体转移至预先准备好的收集液微滴中。将卵丘细胞从复合体上分离。用较大的移液管将去卵丘的卵母细胞转移至培养液微滴中。
在操作前,将卵母细胞置于培养箱中至少恢复一小时。通过机械拉针仪拉制硼硅酸盐玻璃毛细管来制备注射针。从单孔腔载玻片上取下培养基腔室。
为构建显微注射平台,将5 µL收集培养基液滴尽可能靠近0.5 µL SIR N-A-C-R-N-A或用于寡核苷酸注射的morpholino液滴,并用矿物油覆盖后置于显微镜载物台上。将注射针和持卵针插入相应的针夹中,并移至收集培养基液滴内。打开连接至皮升注射仪和防震台的氮气罐。
在向注射移液管中加入培养基的同时,轻轻将其尖端与持卵移液管轻触以打开尖端。从培养箱中取出5到10个卵母细胞,转移至平台上的收集培养基液滴中。现在,在按压“清除”键的同时,设置皮升注射仪的注射参数为5至10皮升的注射体积。
将注射针移至材料液滴处吸取,然后返回培养基液滴中。使用持卵移液管捕获一枚卵母细胞,并沿x轴方向将注射针、卵母细胞与持卵移液管对齐。
在更高倍镜下,将注射移液管推进穿过卵母细胞,注意避免触碰细胞核。一旦刺穿质膜,在注射后按“注射”键,然后撤出针头,释放卵母细胞并重复操作。待所有卵母细胞注射完成后,将其放回培养箱中,在培养液中孵育所需时间,通常为12至24小时。
然后将细胞通过数滴CZB洗涤,并转移至覆盖于油层下的微滴CZB中,孵育16小时,以完成减数第二次分裂中期的成熟过程。取750微升含有100微摩尔Mastri的CZB加入组织培养皿的孔中,该培养皿的外圈需加有水。接着将卵母细胞通过数滴含Mastri的CZB洗涤,然后转移至组织培养皿中,孵育1小时。
将卵置于含有2%多聚甲醛PBS溶液的表面皿中,在室温下固定20分钟。接着,将卵转移至封闭液中,于4°C保存,直至对卵进行通透处理。在室温下通透15分钟,然后用大量封闭液反复漂洗。
在避光且保持湿润的96孔板盖中进行后续操作。室温下,将卵转移至25 µL封闭液液滴中,孵育15分钟。随后,为标记着丝粒,将卵转移至含有Crest抗血清(1:40稀释)的封闭液液滴中,孵育至少1小时。
然后用三滴封闭液洗涤,每次孵育15分钟。将卵转移至含有荧光四标记抗体的封闭液滴中,孵育1小时。用封闭液洗涤两次,以检测染色体。
将样品置于细胞毒素绿色染料与封闭液按1:5,000比例稀释的溶液中孵育,随后将样品用5微升Vector Shield封片剂封片。在盖玻片四个角预期位置各放置一小滴凡士林,以防止压碎卵细胞。盖上盖玻片后,用指甲油密封,并将载玻片置于4摄氏度的玻片盒中保存,直至进行共聚焦显微镜观察。使用100倍物镜成像时,在Z轴方向以0.4微米的步长进行采集,利用如美国国立卫生研究院(NIH)提供的Image J等成像软件,对中期II卵细胞的着丝粒完整区域进行成像。正常二倍体小鼠卵细胞含有20对动粒,因此在此Z轴投影图中可见共40个信号点。DNA显示为绿色,K-动粒蛋白显示为红色。
箭头指向两条不同的染色体臂,表明在动粒编号 17 和编号 18 处存在重叠,这是在显微注射操作之后的观察结果。还可以采用其他方法,如蛋白质印迹、实时 PCR、纺锤体构型分析、染色体排列评估以及体外受精,以回答更多科学问题,例如:目标蛋白的扰动如何影响减数分裂成熟过程及发育潜能。观看本视频后,您应能充分掌握如何操控所有位点,并评估减数分裂中期 II 卵母细胞的 PLO。
本文讨论了将物质导入卵母细胞以及研究减数分裂成熟以评估倍性的方法。卵母细胞易发生非整倍性,这可能导致不孕和发育障碍。
评估卵母细胞的倍性对于理解影响生殖健康和发育结果的染色体分离机制至关重要。该方法可直接评估雌性配子中的非整倍性,为生育力研究中的靶点验证提供一个生理相关性高的体系。通过将显微注射与完整卵细胞倍性评估相结合,该方法有助于解析减数分裂Ⅰ和Ⅱ中相关基因的功能机制,为不孕症和发育障碍的临床前模型提供依据。
该方法适用于早期发现阶段的工作流程,在卵母细胞中进行基因扰动后,通过功能成熟及定量倍性检测来指导靶点筛选。