Name: 三维人体皮肤重建模型:一种工具来研究正常皮肤恶性黑色素瘤进展 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 2 s
Description: 学习三维人体皮肤重建技术，用于研究黑色素细胞生物学和黑色素瘤进展机制。该模型模拟正常皮肤结构，结合成纤维细胞与角质形成细胞培养，为临床前药物评估提供可靠工具。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

感谢Wistar研究所动物设施、显微技术设施、组织技术设施和研究中心供应中心。本研究部分由美国国立卫生研究院资助，项目编号为CA 076674、CA 098101、CA 025874和CA 10815。

1. 三维人皮肤重建模型：
<ol>
 <li>无细胞层的制备：在50 mL离心管中，将以下试剂在冰上混合：0.59 mL 10X EMEM， 50 μl 200 mM L-谷氨酰胺，0.6 mL 胎牛血清 120 μl 7.5% 碳酸氢钠和 4.6 mL 牛 I 型胶原蛋白。将 1 mL 混合液加入组织培养板的每个插件中。室温孵育 30 分钟，使凝胶充分凝固。混合液的颜色应为淡黄色至粉红色。</li>
 <li>用0.25%胰蛋白酶/EDTA将培养瓶中的人成纤维细胞消化，加入含10%胎牛血清的DMEM终止消化。离心收集细胞，重悬于0.45 × 10⁶6 在含10% FBS的1.5 mL DMEM中培养细胞。对于真皮干细胞，通过轻敲培养瓶使细胞球脱落，离心收集6600个真皮细胞球（当真皮干细胞在干细胞培养基中生长时，会形成类似于神经球的细胞球状结构）。</li>
 <li>细胞层制备：在50 mL离心管中加入以下成分，冰上混合：1.65 mL 10X EMEM， 150 μl 200 mM L-谷氨酰胺，1.85 mL 胎牛血清 350 μl 7.5% 碳酸氢钠，14 mL 牛 I 型胶原蛋白，以及步骤 2 中制备的 1.5 mL 成纤维细胞悬液（或 alternatively，使用 0.45 x 10⁶ 个细胞）6 成纤维细胞和6600个真皮球体加入1.5 mL真皮干细胞重建培养基I中，充分混匀。将3 mL混合液加入每个去细胞层包被的插入式培养小室中。于37℃孵育45分钟 37 °C 在5 % CO₂环境中2 组织培养孵育箱。混合液的颜色应从淡黄色至粉红色。待凝胶凝固后，在皮肤重建培养板的每个孔中加入含10%胎牛血清的DMEM（插入物内2 mL，外10 mL）。孵育4天，并确保凝胶发生收缩。</li>
 <li>吸弃每个小室内外两侧的培养基。向小室内侧加入2 mL洗涤液（含1%透析胎牛血清的HBSS），外侧加入10 mL，以去除常规血清。于37°C孵育1小时 37 °C.</li>
 <li>皮肤重建培养基的制备：
 <ol>
 <li>对于正常黑素细胞和真皮干细胞重建：配制基础培养基（500 mL），混合以下试剂：490 mL 无血清角质形成细胞培养基、1.8 mL 牛垂体提取物、10 mL 透析胎牛血清。 500 μl 的 10 μg/mL 干细胞因子， 562.5 μl 的 4 μg/mL bFGF 和 500 μl 的 264 μg/mL ET-3。培养基 I：加入 10 μl EGF的 100 μg/mL 至100 mL基础培养基中。培养基II：添加 2 μl EGF 加至 100 mL 基础培养基中。培养基 III：添加 720 μl CaCl2 从1 M稀释至300 mL基础培养基。</li>
 <li>用于黑色素瘤皮肤重建：配制 Medium I（100 mL），混合以下试剂：72.5 mL DMEM、24 mL F12（HAM's）、2 mL 200 mM L-谷氨酰胺， 200 μl 氢化可的松 269 μg/mL, 200 μl 500X ITES 200 μl 0.05 M O-磷酸乙醇胺， 200 μl 90 mM 腺嘌呤， 200 μl 2 nM 的孕酮， 240 μl CaCl2 1 M 的 200 μl 10 nM 三碘甲状腺原氨酸及 100 μl 去螯合新生小牛血清（将3 g Chelex 100溶解于100 mL血清中，搅拌1.5小时） 4 °C，过滤除菌）。配制100 mL培养基II，混合以下试剂：72.5 mL DMEM、24 mL F12（HAM's）、2 mL 200 mM L-谷氨酰胺， 200 μl 氢化可的松 269 μg/mL, 200 μl 500X ITES 200 μl 0.05 M O-磷酸乙醇胺， 200 μl 90 mM 腺嘌呤， 200 μl 2 nM 的孕酮， 240 μl 1 M CaCl2 200 μl 10 nM 三碘甲状腺原氨酸及 100 μl 新生牛血清。制备300 mL培养基III，混合以下试剂：142.5 mL DMEM、142.5 mL F12（HAM's）、6 mL 200 mM L-谷氨酰胺， 600 μl 氢化可的松 269 μg/mL, 600 μl 500X ITES 600 μl 0.05 M 磷酸乙醇胺 600 μl 90 mM 腺嘌呤， 600 μl 2 nM 的孕酮， 720 μl CaCl2 1 M 的 600 μl 10 nM 三碘甲状腺原氨酸和 6 mL 新生小牛血清</li>
 </ol>
 </li>
 <li>用0.05%胰蛋白酶/EDTA将人角质形成细胞从培养瓶中消化，用大豆胰蛋白酶抑制剂（250 mg/L，溶于1×磷酸盐缓冲液）中和胰蛋白酶，离心，将细胞沉淀重悬于4.17 × 10⁶细胞/mL6 细胞/mL，于皮肤重建培养基 I 中。</li>
 <li>用0.05%胰蛋白酶/EDTA将人黑色素细胞或黑色素瘤细胞从培养瓶中消化，用大豆胰蛋白酶抑制剂中和胰蛋白酶，离心，将细胞沉淀重悬于0.83 × 10⁶6 细胞/mL，于皮肤重建培养基 I 中</li>
 <li>移除每个小室内外两侧的洗涤液。</li>
 <li>加入皮肤重建培养基I（1.5 mL加至每个插入物内侧，10 mL加至外侧）。</li>
 <li>取 600 μl 角质形成细胞的细胞悬液 600 μl 黑色素细胞或黑色素瘤细胞的细胞悬液，充分混匀。分装 200 μl 将混合细胞悬液逐滴加入每个插入物的内侧。对于真皮干细胞重建，使用 100 μl 仅用于角质形成细胞悬液。在37°C、5% CO2培养箱中孵育2天。 37 °C.</li>
 <li>吸出每个插入物内部和外部的皮肤重建培养基 I。加入皮肤重建培养基 II（内部 2 mL，外部 10 mL）。于 37 °C、5% CO₂ 培养箱中继续培养 2 天 37 °C.</li>
 <li>吸出每个插入物内部和外部的皮肤重建培养基II，仅在外侧加入7.5 mL皮肤重建培养基III。从此开始，重建皮肤表面暴露于空气中。每隔一天更换一次培养基III，持续至第18天。</li>
 <li>第18天收获皮肤重建组织：
 <ol>
 <li>吸出插入物内部和外部的培养基。</li>
 <li>用镊子从托盘中取出插件。</li>
 <li>用手术刀片沿接近边缘处画出一个圆形，切割出重建结构（包括聚碳酸酯滤膜）。</li>
 <li>在硬质表面上将重建物和滤膜各切成两半。</li>
 </ol>
 </li>
 <li>对于石蜡切片：将重建组织的一半置于组织学包埋盒中，夹在两张黑色TBS活检纸之间，将整个包埋盒浸入10%福尔马林中固定超过4小时。随后将包埋盒转移至70%乙醇中，并于 4 °C 直到准备进行石蜡包埋切片处理时为止。</li>
 <li>对于冷冻切片：
 <ol>
 <li>将另一半重建样本置于50%蔗糖溶液中 4 °C 1-2小时，然后将蔗糖更换为2 M，并置于 4 °C 再继续孵育1-2小时。</li>
 <li>将最佳切割温度冷冻介质（OCT）加入一次性底模中，使其充满约50%的模具体积。避免OCT中产生气泡。</li>
 <li>用镊子夹住重建组织的边缘，将其从蔗糖溶液中取出。放置于Kimwipes纸上，直至Kimwipes吸干蔗糖溶液。</li>
 <li>用镊子和刮勺将重建组织转移至覆盖有OCT的底模上。用更多OCT覆盖重建组织的顶部，直至底模完全填满。确保OCT中无气泡，以免影响切片操作。</li>
 <li>将底模均匀地放置在粉碎的干冰上，使OCT完全冻结。</li>
 <li>用锡箔纸包裹基模并置于 -70 °C 直到准备使用冷冻切片机进行切片为止。</li>
 </ol>
 </li>
 <li>在小鼠身上移植皮肤重建组织：
 <ol>
 <li>准备一个50 mL Falcon管，加入5 mL DMEM（用于小鼠皮肤的冻存与解冻）。</li>
 <li>使用约6周龄的雌性SCID裸鼠（无毛非近交系）。</li>
 <li>小鼠使用异氟烷（EZ麻醉系统）进行麻醉：首先在诱导室中以4%异氟烷进行初始麻醉（在将小鼠移至手术台之前），随后在手术过程中通过鼻罩呼吸器维持麻醉（异氟烷浓度：1.5–2%）。使用加热垫提供保温以防止低体温，并涂抹无菌眼用润滑剂以预防麻醉期间的眼部损伤。</li>
 <li>将600 mL水倒入烧杯中，置于加热板上，保持水温在40 - 60 °C.</li>
 <li>用复方安息香酊和酒精棉片清洁小鼠皮肤。</li>
 <li>在小鼠背部上方标记一条线，以便后续缝合时保持相同位置。</li>
 <li>使用虹膜剪和镊子在小鼠背部上方剪出一个直径约1.2 cm的圆形创面。用无菌纱布覆盖创面。将圆形小鼠皮肤放入5 mL DMEM中，然后置于液氮容器中直至完全冻结。将冻存管放在加热板上的热水中解冻，直至完全融化。重复此冻融过程3次。</li>
 <li>使用手术刀将皮肤重建组织从Transwell上分离，并极为小心地移除膜，将皮肤重建组织（表皮面朝上）转移至创面床顶部。</li>
 <li>将小鼠皮肤（表皮面朝上）放置在皮肤重建模型的顶部。</li>
 <li>在先前标记的位置缝第一针，第二针缝在底部，然后在两侧各缝两针以固定小鼠皮肤。</li>
 <li>移植后清洁小鼠皮肤。取下鼻罩，将小鼠置于加热垫上直至清醒并能自主活动。</li>
 <li>将小鼠放入新笼子中。</li>
 <li>术后镇痛：手术后立即皮下注射美洛昔康（1 mg/kg），术后24小时和48小时各给药一次。</li>
 </ol>
 </li>
</ol>
2. 代表性结果：
含有正常黑素细胞和真皮干细胞的皮肤重建 
皮肤重建物在带有插件的特殊6孔板中进行培养。真皮层在前四天使用含10%胎牛血清（FBS）的DMEM培养基进行培养（图1A）。当角质形成细胞与黑素细胞或黑色素瘤细胞共接种时，使用皮肤重建培养基I（图1B）。在第9天将表皮暴露于空气中，以促进角质形成细胞的分化（图1C）。到第18天，皮肤重建物的表皮由多层分层的角质形成细胞构成，未分化的基底层与逐级分化的上层细胞呈垂直排列（图1D）。利用黑素细胞标志物S100对重建组织切片染色显示，黑素细胞定位于表皮基底层，并通过树突状突起与多个角质形成细胞相互连接（图1E）。真皮层包含嵌入I型胶原基质中的成纤维细胞，而IV型胶原的沉积则标志着分隔表皮与真皮的基底膜（图1F）。当将真皮干细胞（用GFP慢病毒载体标记）与成纤维细胞共同嵌入I型胶原基质中时，这些干细胞会迁移至表皮并分化为黑素细胞（1）（图2）。表皮中形成多层角质形成细胞结构。
黑色素瘤肿瘤的皮肤重建 
临床病理学研究表明，黑色素瘤的进展呈逐步过程：普通获得性痣、发育不良痣、RGP（水平生长期）黑色素瘤、VGP（垂直生长期）黑色素瘤以及转移性黑色素瘤（7）。在二维培养中，不同阶段的黑色素瘤细胞系在形态上彼此相似（图3A-D），但当它们被纳入皮肤重建模型时，细胞的行为则反映了其体内的特征。in vivo。在皮肤重建模型中，正常黑色素细胞的位置和增殖速率受到严格调控（图3E）。RGP期原发性黑色素瘤WM35主要在表皮中增殖（图3F），而VGP期黑色素瘤WM793则侵入真皮层生长（图3G）。转移性黑色素瘤1205Lu则强烈侵袭至真皮深层（图3H）。
<img alt="组织工程示意图：A-C为组织样本的构建过程，D-F为显微分析结果。" src="/files/ftp_upload/2937/2937fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 
图1. 含正常黑素细胞的皮肤重建结构。 A-C展示了皮肤重建结构的大体外观。A. 成纤维细胞与胶原混合后在含10%胎牛血清（FBS）的DMEM培养基中培养，形成真皮层。B. 将角质形成细胞和黑素细胞接种于真皮层上方，并在皮肤重建培养基中生长。C. 第9天将表皮暴露于空气中。D. H&amp;E染色的皮肤重建切片显示表皮具有垂直排列的基底层以及依次分化的多层细胞结构；真皮层中含有嵌入Ⅰ型胶原基质中的成纤维细胞。E. S100阳性黑素细胞（黑色箭头）排列于基底膜处，并与多个角质形成细胞相接触。F. 胶原Ⅳ染色显示了分隔表皮与真皮的基底膜。D-F中所有染色均在经甲醛固定、石蜡包埋的切片上进行。
<img alt="数天内的细胞生长阶段、荧光显微镜图像，HMB45染色由箭头指示。" src="/files/ftp_upload/2937/2937fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图2"> 
图2. 皮肤重建结构中的真皮干细胞迁移至表皮并分化为黑色素细胞。 在接种角质形成细胞后的第5天，单个GFP阳性细胞（绿色）开始从细胞球向外迁移。此时表皮仍由单层细胞构成。第8天时，少数细胞到达表皮-真皮交界处。到第10天，GFP阳性细胞紧密排列于基底膜位置。迁移至表皮的GFP阳性细胞表达黑色素细胞标志物HMB45（红色，由白色箭头指示）。细胞核用DAPI染色（蓝色）。表皮已发育成多层结构。基底膜以白色虚线标示。
<img alt="细胞培养形态学和组织学切片；细胞结构和组织样本的显微镜图像。" src="/files/ftp_upload/2937/2937fig3.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图3"> 
图3. 不同阶段黑色素瘤的皮肤重建模型： A-D. 在二维培养条件下生长的正常黑素细胞和黑色素瘤细胞。A. 包皮来源的黑素细胞。B. RGP期WM35细胞。C. VGP期WM793细胞。D. 转移性黑色素瘤1205Lu细胞。E. 正常黑素细胞定位于基底膜处。F. RGP期黑色素瘤WM35细胞在表皮内以细胞簇形式生长。G. VGP期黑色素瘤WM793细胞通过基底膜侵入真皮层。H. 转移性黑色素瘤1205Lu细胞强烈侵袭至真皮深层。
 
故障排除
<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>问题</td>
 <td>故障排除</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>胶原混合物未凝固</td>
 <td>胶原混合物的颜色应为淡黄色至粉红色，否则pH值可能不正确，导致胶原无法形成凝胶。如果颜色呈亮黄色，应逐滴加入更多碳酸氢钠。</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>胶原在混合过程中提前沉淀</td>
 <td>在将胶原混合物加入插入物之前，应始终保持所有组分处于冰上</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>收缩后的胶原不均匀（一侧比另一侧厚）</td>
 <td>校准培养箱的搁板</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>表皮形成的角质形成细胞层数少于三层</td>
 <td>使用低代次的未分化角质形成细胞</td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

<ol><li>Sun, T., Jackson, S., Haycock, J. W., MacNeil, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+skin+cells+in+3D+rather+than+2D+improves+their+ability+to+survive+exposure+to+cytotoxic+agents%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Culture of skin cells in 3D rather than 2D improves their ability to survive exposure to cytotoxic agents.</a> J Biotechnol. 122, 372-381 (2006).</li>
<li>Smalley, K. S., Lioni, M., Herlyn, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+isn%27t+flat%3A+taking+cancer+biology+to+the+next+dimension%5BTitle%5D)+AND+%22In+Vitro+Cell+Dev+Biol+Anim%22%5BJournal%5D)">Life isn't flat: taking cancer biology to the next dimension.</a> In Vitro Cell Dev Biol Anim. 42, 242-247 (2006).</li>
<li>Sun, T., Norton, D., McKean, R. J., Haycock, J. W., Ryan, A. J., MacNeil, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+3D+cell+culture+system+for+investigating+cell+interactions+with+electrospun+fibers%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Development of a 3D cell culture system for investigating cell interactions with electrospun fibers.</a> Biotechnol Bioeng. 97, 1318-1328 (2007).</li>
<li>Kremer, M., Lang, E., Berger, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organotypical+engineering+of+differentiated+composite-skin+equivalents+of+human+keratinocytes+in+a+collagen-GAG+matrix+%28INTEGRA+Artificial+Skin%29+in+a+perfusion+culture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Langenbecks+Arch+Surg%22%5BJournal%5D)">Organotypical engineering of differentiated composite-skin equivalents of human keratinocytes in a collagen-GAG matrix (INTEGRA Artificial Skin) in a perfusion culture system.</a> Langenbecks Arch Surg. 386, 357-363 (2001).</li>
<li>Escámez, M. J., Garcí, M., Larcher, F., Meana, A., Muñoz, E., Jorcano, J. L., Del Río, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vivo+model+of+wound+healing+in+genetically+modified+skin-humanized+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Invest+Dermatol%22%5BJournal%5D)">An in vivo model of wound healing in genetically modified skin-humanized mice.</a> J Invest Dermatol. 123, 1182-1191 (2004).</li>
<li>Li, L., Fukunaga-Kalabis, M., Yu, H., Xu, X., Kong, J., Lee, J. T., Herlyn, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+dermal+stem+cells+differentiate+into+functional+epidermal+melanocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Human dermal stem cells differentiate into functional epidermal melanocytes.</a> J Cell Sci. 123, 853-860 (2010).</li>
<li>Meier, F., Nesbit, M., Hsu, M. Y., Martin, B., Van Belle, P., Elder, D. E., Schaumburg-Lever, G., Garbe, C., Walz, T. M., Donatien, P., Crombleholme, T. M., Herlyn, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+melanoma+progression+in+skin+reconstructs%3A+biological+significance+of+bFGF%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Human melanoma progression in skin reconstructs: biological significance of bFGF.</a> Am J Pathol. 156, 193-200 (2000).</li>
<li>Yu, H., McDaid, R., Lee, J., Li, L., Kumar, S. M., Elder, D. E., Van Belle, P., Gimotty, P., Guerra, M., Hammond, R., Nathanson, K. L., Dalla Palma, M., Herlyn, M., Xu, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+BRAF+mutation+and+p53+inactivation+during+transformation+of+a+subpopulation+of+primary+human+melanocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">The role of BRAF mutation and p53 inactivation during transformation of a subpopulation of primary human melanocytes.</a> Am J Pathol. 174, 2367-2377 (2009).</li>
<li>Lee, J. T., Li, L., Brafford, P. A., van den Eijnden, M., Halloran, M. B., Sproesser, K., Haass, N. K., Smalley, K. S., Tsai, J., Bollag, G., Herlyn, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PLX4032%2C+a+potent+inhibitor+of+the+B-Raf+V600E+oncogene%2C+selectively+inhibits+V600E-positive+melanomas%5BTitle%5D)+AND+%22Pigment+Cell+Melanoma+Res%22%5BJournal%5D)">PLX4032, a potent inhibitor of the B-Raf V600E oncogene, selectively inhibits V600E-positive melanomas.</a> Pigment Cell Melanoma Res. 23, 820-827 (2010).</li>
<li>Tsai, J., Lee, J. T., Wang, W., Zhang, J., Cho, H., Mamo, S., Bremer, R., Gillette, S., Kong, J., Haass, N. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discovery+of+a+selective+inhibitor+of+oncogenic+B-Raf+kinase+with+potent+antimelanoma+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Discovery of a selective inhibitor of oncogenic B-Raf kinase with potent antimelanoma activity.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 105, 3041-3046 (2008).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

我们已描述了利用正常人黑素细胞、真皮干细胞和黑色素瘤细胞生成三维皮肤重建模型的方法。在单层培养条件下，无论细胞来源或临床分期如何，黑素细胞均呈现相似的形态（扁平状、梭形或更具树突状）。相比之下，三维皮肤重建模型能够重现黑色素瘤细胞分期特异性的生物学特性。正常人黑素细胞以单个细胞形式定位于表皮与真皮层之间的基底膜处。RGP期原发性黑色素瘤细胞沿基底膜形成小簇状生长，而更具侵袭性的VGP期黑色素瘤细胞则形成大簇并突破基底膜侵入真皮层。转移性黑色素瘤细胞则向各个方向生长，以单个细胞或细胞簇的形式深入侵入真皮层。该模型可通过测量侵袭深度和增殖范围进行定量分析。除了用于正常及恶性黑素细胞的表征外，利用该模型还可直接诱导真皮干细胞分化为成熟黑素细胞，后者可归巢至表皮基底层并建立 真正有效的 通过上调E-cadherin与角质形成细胞进行通讯（6）。 
利用病毒载体，我们能够激活或失活基因功能，从而更好地理解皮肤重建中每种细胞类型所表达基因的动态变化及其功能意义，这有望成为研究黑素细胞转化机制以及黑色素瘤进展的有效模型（8）。通过将皮肤重建物移植到免疫缺陷动物体内，现已能够对细胞表型进行长期观察。这种人源皮肤-小鼠嵌合体是研究黑色素瘤发生及黑色素瘤转移的优秀研究工具。
皮肤重建模型也可作为药物评估的有效平台。许多在二维培养条件下能够清除癌细胞的药物，在实验和临床应用中往往效果甚微。如图所示，在 体内 肿瘤，三维培养中的黑色素瘤细胞通常对在二维培养中有效的药物产生耐药性，表明微环境会调控黑色素瘤的信号通路。为了成功进行药物研发，三维皮肤重建模型是预测化合物效应的理想临床前工具。 体内 (9,10). 
总之，皮肤重建模型弥合了体外与体内研究之间的鸿沟。 体外 和 体内 研究将有助于更深入地了解哪些基因参与了转化过程，以及干细胞如何促进这一转化。

<table><tbody><tr><td>10x EMEM</td><td>BioWhittaker</td><td>12-684F</td><td></td></tr><tr><td>L-谷氨酰胺</td><td>GIBCO，由 Life Technologies 生产</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清</td><td>Hyclone</td><td>SH-30071.02</td><td></td></tr><tr><td>牛跟腱酸提取胶原蛋白</td><td>Organogenesis</td><td>200/50</td><td></td></tr><tr><td>带插件的组织培养6孔板</td><td>Organogenesis</td><td>9285</td><td></td></tr><tr><td>无血清角质形成细胞培养基</td><td>GIBCO，由 Life Technologies 生产</td><td>17005042</td><td></td></tr><tr><td>透析胎牛血清</td><td>Hyclone</td><td>SH-30079.03</td><td></td></tr><tr><td>重组人干细胞因子</td><td>Fitzgerald Industries</td><td>RDI-307-255X</td><td></td></tr><tr><td>碱性成纤维细胞生长因子（bFGF）</td><td>Fitzgerald Industries</td><td>30R-AF015</td><td></td></tr><tr><td>人内皮素-3</td><td>American Peptide</td><td>88-5-10</td><td></td></tr><tr><td>氯化钙</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C-7902</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>JRH 生物科学</td><td>56430-10L</td><td></td></tr><tr><td>F12 (HAM&amp;rsquo;s)</td><td>GIBCO，由 Life Technologies 生产</td><td>11765-54</td><td></td></tr><tr><td>氢化可的松</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H-0888</td><td></td></tr><tr><td>胰岛素、转铁蛋白、乙醇胺、硒（ITES）</td><td>BioWhittaker</td><td>17839Z</td><td></td></tr><tr><td>O-磷酸乙醇胺</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P0503</td><td></td></tr><tr><td>腺嘌呤</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9795</td><td></td></tr><tr><td>孕酮</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-8783</td><td></td></tr><tr><td>三碘甲腺原氨酸</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T-5516</td><td></td></tr><tr><td>新生小牛血清</td><td>Hyclone</td><td>SH3011802</td><td></td></tr><tr><td>10% 缓冲福尔马林</td><td>Surgipath</td><td>00600</td><td></td></tr><tr><td>最佳切割温度冷冻介质（OCT）</td><td>Sakura Finetek</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>多用包埋盒</td><td>Surgipath</td><td>02293-BX</td><td></td></tr><tr><td>TBS 活检纸</td><td>Triangle Biomedical Sciences</td><td>BP-B</td><td></td></tr><tr><td>TBS 活检纸</td><td>Triangle Biomedical Sciences</td><td>BP-B</td><td></td></tr><tr><td>一次性底模</td><td>Fisher Scientific</td><td>15-182-501C</td><td></td></tr><tr><td>复方安息香酊</td><td>Professional Disposables, Inc</td><td>S42450</td><td></td></tr><tr><td>酒精消毒棉片</td><td>CVS 药房</td><td></td><td></td></tr><tr><td>黑色编织丝线 5-0</td><td>Ethicon Inc.</td><td>682G</td><td></td></tr><tr><td>纱布敷料（无菌）</td><td>CVS 药房</td><td></td><td></td></tr><tr><td>镊子</td><td>Roboz 外科器械公司</td><td>RS5070</td><td></td></tr><tr><td>虹膜剪</td><td>Roboz 外科器械公司</td><td>RS5913</td><td></td></tr><tr><td>手术刀片</td><td>Feather Safety Razor Co, Ltd.</td><td>2976</td><td></td></tr><tr><td>EZ 麻醉系统</td><td>Euthanex Corp.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>SCID 无毛非近交系小鼠</td><td>Charles River Laboratories</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

三维人类皮肤重建模型：研究正常皮肤与黑色素瘤进展的工具

The Three-Dimensional Human Skin Reconstruct Model: a Tool to Study Normal  Skin and Melanoma Progression

目前，实验性皮肤生物学中的大多数体外研究均在二维（2D）单细胞培养体系中进行，而越来越多的证据表明，当细胞生长于三维（3D）细胞外基质中并与其他细胞相互作用时，其行为会有所不同（1-5）。小鼠模型已被广泛用于研究组织形态发生的体内过程。然而，小鼠与人类皮肤在细胞结构和生理特性上存在显著差异，这使得将小鼠研究结果外推至人类变得困难。由于小鼠皮肤中的黑素细胞主要定位于毛囊中，因此其生物学特性与主要位于表皮基底层的人类黑素细胞明显不同。近年来开发的3D人皮肤重建模型使研究人员能够探究不同类型细胞之间的细胞-基质及细胞-细胞相互作用。这些重建皮肤包含一个由成纤维细胞嵌入I型胶原基质构成的“真皮”层，一个由多层分化角质形成细胞组成的“表皮”层，以及一个将表皮与真皮分离的功能性基底膜。胶原蛋白提供结构支架、营养输送以及细胞间相互作用的可能。包含黑素细胞的3D皮肤模型可重现人类皮肤中黑素细胞稳态及黑色素瘤进展的自然特征。与体内情况相似，在重建皮肤中，黑素细胞位于基底膜处，并与基底层角质形成细胞交错分布。黑色素瘤细胞表现出与原始肿瘤阶段（RGP、VGP及转移性黑色素瘤细胞）一致的特征体内特性。最近，研究人员已在人类真皮中鉴定出真皮干细胞（6）。这些多能干细胞可迁移至表皮并分化为黑素细胞。

在本报告中，我们描述了一种三维皮肤重建模型，该模型在结构和组成上模拟了人类皮肤。该皮肤重建模型已被用于研究黑素细胞的生理特性、黑色素瘤的进展以及真皮干细胞的命运。此外，该模型还可作为药物评估的临床前工具。

大多数实验皮肤生物学的体外研究均在二维（2D）单细胞培养体系中进行，而越来越多的证据表明，细胞……

本实验的总体目标是构建一种三维人皮肤重建模型，用于黑素细胞、黑色素瘤及皮肤干细胞生物学的研究。首先，用中和的牛胶原蛋白包被组织培养板的插入物；第二步，利用成纤维细胞与胶原蛋白构建含细胞的真皮层结构。接下来，由角质形成细胞与黑素细胞或黑色素瘤细胞混合构建表皮区室。该实验程序的最后一步是在第18天收获皮肤重建组织，并将重建的皮肤移植到小鼠体内。最终，通过移植组织的免疫组织化学和免疫荧光分析，可观察到含有黑素细胞的正常皮肤结构、正常干细胞的迁移与分化，以及分期特异性的黑色素瘤表型。20年前，我们开发了皮肤重建模型，因为在早期研究中我们发现，培养在培养皿中的正常黑素细胞或黑色素瘤细胞的行为，与处于组织环境中的细胞大不相同。因此，皮肤重建模型非常适合用于观察细胞如何从皮肤的一个区室迁移至另一个位置。将先前制备好的无细胞层胶原混合物置于冰上，然后取一毫升淡黄色溶液加入六孔插入式培养板的每个插件中。将组织培养板置于室温下孵育30分钟，使凝胶充分凝固。在此期间，溶液颜色应由黄色变为粉红色。凝胶凝固的同时，使用0.25%胰蛋白酶-EDTA对人成纤维细胞从培养瓶中进行消化5分钟。随后加入含10%胎牛血清的DMEM培养基以中和消化过程。在室温下以200 × g离心5分钟收集悬浮细胞，然后将细胞重悬于含10% FBS的DMEM中，密度为每1.5毫升含4.5 × 10⁵个细胞。接下来，用先前制备的细胞层胶原混合物填充一个50毫升离心管，并将该管置于冰上。向试管中加入1.5毫升的成纤维细胞悬液并混匀。每孔加入3毫升淡黄色细胞层溶液至无细胞层包被的插入式培养小室中。随后将组织培养板置于含5%二氧化碳的组织培养孵箱中，在37摄氏度下孵育45分钟，在孵育期间保持条件稳定。细胞层溶液的颜色也应由黄色变为粉红色。待上层凝胶凝固后，在组织培养板的插入物内侧加入含有10%FBS的2毫升DMEM，外侧加入10毫升。将组织培养板孵育四天。在孵育的第四天检查凝胶是否收缩，从每个插入物的内侧和外侧吸出培养基。在插入物内侧加入 2 毫升洗涤培养基，外侧加入 10 毫升，以洗去常规血清。然后将培养板在 37 °C 下孵育 1 小时，以生成表皮。首先，用胰蛋白酶处理人角质形成细胞。然后，孵育5分钟后，在200 × g离心5分钟以收集脱落的细胞，随后使用大豆胰蛋白酶抑制剂中和胰蛋白酶。最后，将细胞沉淀重悬于皮肤培养基中，浓度为每毫升4.17 × 10⁶个细胞。在收获角质形成细胞后，重新构建培养基。将人黑素细胞在冰上用胰蛋白酶消化一到两分钟。再次使用大豆胰蛋白酶抑制剂中和胰蛋白酶。然后在与之前相同的条件下离心细胞，将黑色素细胞沉淀重悬于皮肤中，浓度为每毫升8.3 × 10⁵个细胞，并同时重新配制皮肤重建培养基一。接下来，从已制备的真皮层组织培养板的每个插入物的内侧和外侧均移除洗涤培养基。通过向每个插入物的内部加入1.5毫升皮肤重建培养基、外部加入10毫升培养基来更换洗涤液。然后将600微升角质形成细胞悬液与600微升黑素细胞悬液混合。取200微升混合后的细胞悬液进行接种。逐滴加入每个插入物的内部。将组织培养板在37摄氏度下孵育两天。孵育细胞后，吸除每个插入物内外的皮肤重建培养基一，然后在插入物内部加入2毫升皮肤重建培养基二，在外部加入10毫升皮肤重建培养基二。然后将重建组织在37摄氏度下再孵育两天。第二次孵育两天后，从每个插入物的内部和外部吸出皮肤重建培养基二。现在仅向插入物的外部加入7.5毫升皮肤重建培养基三。将重建组织放回培养箱中，并更换皮肤。每隔一天更换一次重建培养基，直至第18天。在培养的第18天，吸出皮肤重建组织培养板中插入物内部和外部的培养基。用镊子将插入物从托盘中取出。用手术刀沿靠近边缘处划出一个圆形，切下包含聚碳酸酯滤膜的构建物。然后将带有滤膜的重建组织放在硬质表面上，用刀片将其切成两半。将重建组织的一半置于黑色TBS活检纸上，然后将纸放入组织学包埋盒中。将整个包埋盒浸入10%福尔马林中固定超过四小时。随后将包埋盒转移至70%乙醇中，并在4°C下保存，直至准备进行石蜡包埋处理。将重建样本的另一半置于4°C条件下，在50%蔗糖溶液中浸泡1至2小时。随后更换为2摩尔蔗糖溶液，并在4°C下继续保存1至2小时。向底模中加入适量的OCT包埋剂（最佳切割温度冷冻介质），填充至一半高度。避免产生气泡。用镊子夹住重建组织的边缘，将其从蔗糖溶液中取出，放置在无尘纸巾上，直至蔗糖被完全吸收。使用镊子和刮勺，将重建组织转移至 OCT 包埋盒中。继续添加 OCT 以覆盖重建组织的顶部，直至包埋盒完全填满，注意再次避免产生气泡。将样本盒均匀地放置在碎干冰上，使OCT完全冻结。然后包裹住底模和铝箔，于-70摄氏度保存，直至准备使用冷冻切片机进行切片。为准备在小鼠上移植皮肤重建组织，先将容器中装入液氮，并向50毫升离心管中加入5毫升DMEM。取一个烧杯，加入600毫升自来水，将烧杯置于加热板上加热升温。然后选择一只约六周龄的雌性skid无毛非纯系小鼠。用异氟烷麻醉小鼠后。在整个操作过程中使用鼻罩以维持麻醉状态。涂抹无菌眼用润滑剂，并提供保温支持以防止低体温。随后，使用复合苯甲酸酊和酒精消毒棉片清洁小鼠皮肤。在小鼠背部标记一条线，以确保后续缝合时位置一致。使用虹膜剪和镊子在小鼠背部切割出圆形创面，然后用无菌纱布覆盖创面。将圆形小鼠皮肤放入含有DMEM的50毫升离心管中。将试管浸入液氮容器中，直至所有培养基和组织完全冻结。接着，将试管放入盛有热水的烧杯中解冻，直至完全融化。重复此冻融过程三次。使用手术刀将皮肤重建组织从插入物上分离。非常小心地移除膜，然后将皮肤重建组织转移至小鼠伤口床的表面。现在，将小鼠皮肤放置在皮肤重建组织的上方。确保第一根缝线位于先前标记的标记物上方，第二根位于下方。然后在皮肤重建物两侧使用另外两根缝线固定小鼠皮肤。移植后清洁小鼠皮肤，随后将小鼠放入新的笼子中。在第18天，皮肤重建物的表皮由分层的角质形成细胞层组成，未分化的基底层和依次分化的各层呈垂直排列。使用黑色素细胞标记物对重建组织切片进行染色。如黑色箭头所示，S100显示黑色素细胞排列在表皮的基底层，并通过树突状突起与多个角质形成细胞相连接。真皮层包含成纤维细胞，这些细胞嵌入由I型胶原沉积形成的基质中；IV型胶原指示基底膜的位置，该膜将表皮与真皮分隔开。以下图示说明了表皮中多层角质形成细胞的形成过程。当用GFP慢病毒载体标记的真皮干细胞与成纤维细胞共同包埋于I型胶原基质中时，它们在第5天迁移至表皮并分化为黑色素细胞。接种角质形成细胞后，单个细胞开始从细胞球中迁移出来。请注意，表皮仍由单层细胞构成。在第8天，少数细胞到达表皮-真皮交界处。到第10天，GFP阳性细胞紧密排列在基底膜位置，如图所示。表皮中迁移的GFP阳性细胞表达黑色素细胞标志物HMB 45。当将不同阶段的黑色素瘤细胞系引入皮肤重建模型时，这些细胞的行为可反映其体内的生物学特性。在此图中，可以观察到在二维培养条件下生长的正常黑素细胞和黑色素瘤细胞。如图所示，在皮肤重建组织中，正常黑素细胞的位置和生长速度受到严格调控；处于径向生长阶段的原发性黑色素瘤主要在表皮内增殖，而处于垂直生长阶段的黑色素瘤则会侵袭性地向真皮层生长，如本图所示。最后，此处还可观察到转移性黑色素瘤强烈侵入真皮深层的方式。我们在正常皮肤中的研究为深入了解黑色素瘤的发生和发展奠定了基础。

the-three-dimensional-human-skin-reconstruct-model-tool-to-study

Research

科研

JoVE Journal

Bioengineering

生物工程

三维人体皮肤重建模型：一种工具来研究正常皮肤恶性黑色素瘤进展

本视频详细介绍了生成 体外 用于研究黑色素瘤进展的三维类器官皮肤重建模型。该皮肤模型可模拟器官的结构及多细胞复杂性 体内.

类器官全层皮肤重建的生成：利用人皮肤样本建立三维皮肤模型的操作流程

癌症发生是一个涉及癌细胞与肿瘤微环境之间相互作用的过程。为了剖析其中的分子事件，需要在癌症发展的不同阶段分离出不同的细胞群体。利用基底细胞癌的小鼠模型，我们描述了一种在癌症发生过程中进行细胞分析的实验方案。...

皮肤癌发生过程中的细胞群体分析

本实验方案的目标是构建一种三维全厚度皮肤等效物，其结构类似于天然皮肤。通过特制的自动化致伤装置，可在保持无菌条件下产生精确且可重复的伤口。...

生成三维全层皮肤等效物及自动化伤口制造

我们提出了一种利用大分子拥挤剂（MMC）获取富含细胞外基质蛋白的细胞衍生基质的实验方案。此外，我们还介绍了一种将MMC应用于三维类器官皮肤共培养体系构建的方案，该方法可在维持构建物成熟度的同时缩短培养时间。...

改善二维与三维皮肤模型 体外 使用大分子拥挤效应的模型

在此，我们介绍一种用于构建三维类器官黑色素瘤球体皮肤模型的方案，该模型可重现器官/肿瘤的结构特征和多细胞复杂性 体内...

一种三维类器官黑色素瘤球体皮肤模型

本方案描述了一种简便的方法，可重复且稳定地培养三维重建人表皮。此外，还对表皮屏障模型的结构-功能关系进行了表征。同时展示了重建人表皮在受到促炎刺激后的生物学反应。...

大规模培养三维重建人表皮

本实验方案的目的是描述利用简便且易于获取的技术，生成并进行血管化人皮肤等效物的长期培养及其体积分析。在尽可能的情况下，阐述了各步骤的设计原理，以便研究人员能够根据自身研究需求进行定制化调整。...

自组装血管化人皮肤等效物的生成

本方案描述了如何将人皮肤移植到非肥胖型糖尿病（NOD）-scid...

异种移植皮肤模型用于调控人类免疫反应 体内

本文介绍了一些成本低廉且操作简便的方法，可在细胞培养实验室中常规建立多种3D皮肤模型。研究人员可根据自身需求自行构建模型，而无需依赖 commercially...

从二维（2D）单层培养到三维（3D）多细胞共培养：构建适用于多种应用的皮肤模型

本文介绍了导电金属墨水的平面和三维打印技术。该方法为在微尺度下以非常规布局制造印刷电子、光电子和生物医学器件提供了新的途径。...

平面与三维导电油墨打印

学习三维人体皮肤重建技术，用于研究黑色素细胞生物学和黑色素瘤进展机制。该模型模拟正常皮肤结构，结合成纤维细胞与角质形成细胞培养，为临床前药物评估提供可靠工具。

三维人类皮肤重建模型：研究正常皮肤与黑色素瘤进展的工具

探索更多视频