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当暴露于过敏原(非致病性抗原)时,抗原呈递细胞会加工并呈递该过敏原给2型辅助性T淋巴细胞。这些T淋巴细胞激活B淋巴细胞,使其分化为浆细胞,并产生免疫球蛋白E(IgE)抗体。IgE抗体可结合至循环嗜碱性粒细胞(含有分泌颗粒的细胞)表面的高亲和力IgE特异性Fc受体上。
当再次接触过敏原时,IgE-Fc复合物会识别并与过敏原交联,从而激活嗜碱性粒细胞释放包含细胞因子和溶酶体酶(如β-己糖胺酶)在内的颗粒,引发强烈的炎症反应。
为了在体外筛选测试抗原的致敏潜力,首先使用表达人IgE特异性Fc受体的转导大鼠恶性嗜碱性粒细胞悬液。加入来自过敏供体的含IgE人血清进行处理。IgE抗体将结合并致敏嗜碱性粒细胞上的Fc受体。
接下来,向已致敏的嗜碱性粒细胞中加入缓冲液和适量的待测抗原。该抗原根据其与Fc受体上结合的IgE的亲和力,与抗体发生交联,从而启动嗜碱性粒细胞脱颗粒,释放包括β-己糖胺酶在内的多种介质至溶液中。
将溶液收集至含有β-己糖胺酶荧光底物的新鲜多孔板中并进行孵育。β-己糖胺酶可水解该底物,生成荧光产物。孵育结束后,加入高pH缓冲液以抑制β-己糖胺酶活性,终止反应。
使用微孔板读数仪,检测所形成产物的荧光,该荧光反映了释放的β-己糖胺酶活性,进而反映抗原诱导嗜碱性粒细胞脱颗粒的过敏潜能。
将预孵育的Ag8/血清悬液离心,然后取50 µL离心后的Ag8/血清悬液加入至含人源化RBL细胞的每个孔中,注意不要扰动Ag8细胞沉淀。
使用已致敏但未刺激且不含抗原的细胞作为无抗原对照,以指示最低信号平台或背景值,并且不要对背景和最大裂解对照孔进行致敏。用盖子盖好培养板,在37摄氏度及5%至7%二氧化碳条件下孵育过夜。
吸出含有血清的细胞培养基。将培养板倒置并轻敲吸水纸,以排空培养板,用于洗涤人源化RBL细胞。每次加入200 µL Tyrode缓冲液,洗涤细胞三次;前两次每次洗涤孵育约30秒。第三次加入Tyrode缓冲液后,吸去缓冲液,保留孔内液体,直至准备加入抗原稀释液。
将100微升抗原溶液加入每个含有预致敏人源化RBL细胞的孔中,但不要用抗原刺激最大裂解组和非致敏背景组细胞。
在最大裂解对照孔、非致敏背景对照孔和致敏无抗原孔中各加入 100 微升 Tyrode 缓冲液。将细胞在 37 摄氏度、5% 至 7% 二氧化碳条件下孵育 1 小时。
每孔加入 10 微升 10% Triton X-100 处理最大裂解对照孔,充分混匀,以彻底裂解细胞,实现 β-己糖胺酶的 100% 释放。向一个新的非吸附型 96 孔板中加入 50 微升底物溶液。
将含人源化 RBL 细胞的培养板各孔中的上清液 50 微升转移至含有底物溶液的新培养板中,在 37 摄氏度孵育 1 小时,以使荧光底物发生转化。
每孔加入 100 µL 终止液,并按照文本稿件中所述方法测定荧光。