利用荧光涨落光谱研究细胞接触处的蛋白质相互作用

0 次观看3:42 分钟 • July 8th, 2025

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通过邻近细胞表面的蛋白质介导的细胞间相互作用,可在活细胞中利用荧光涨落光谱分析法进行研究。

首先,分别取表达黏附受体——一种跨膜蛋白——的细胞培养物。来自两个细胞群体的受体用光谱分离的荧光蛋白进行标记。这些荧光标记位于受体的胞质区域,可避免干扰细胞间的相互作用。

弃去培养基,加入胰蛋白酶,以促进细胞脱落。混合两种细胞群体并进行孵育,使相邻细胞的受体形成同型跨相互作用。

将细胞置于共聚焦显微镜下。使用适当波长的激光光源照射样品,激发两种荧光标记产生发射光。寻找两个相邻且具有不同颜色荧光信号并相互接触的细胞。

使用两种荧光标记的光谱通道,获取垂直于细胞膜接触区域的线扫描图像。激光聚焦于样品的一个微小区域——即检测体积。当荧光标记的受体分子扩散进入或离开检测体积时,荧光强度会发生波动。

如果邻近细胞的受体不发生相互作用,它们将各自独立运动,导致荧光强度出现独立波动,表现出较低的交叉相关性。

如果接触中的相邻细胞相互作用 通过 它们的受体以及相互作用的蛋白质会共同扩散,导致其荧光强度出现相关联的波动。

将一个孔中的细胞悬液转移至对应的孔中。用移液器轻轻吹打数次以混匀,然后将混合后的细胞接种到35毫升玻璃底培养皿中,并在37摄氏度和5%二氧化碳条件下培养一天。

在激光扫描共聚焦显微镜软件中设置光路。为避免光谱串扰,选择两条独立的通道,分别依次激发和检测 mEGFP 或 mEYFP 以及 mCherry 或 mCardinal,并选择“逐行切换通道”。检测时,为两个通道使用适当的滤光片。

将含有混合细胞的培养皿放置在样品台上。等待10分钟,以确保温度平衡并减少聚焦漂移,然后在 “定位” 菜单中使用透射光对细胞进行聚焦。寻找一对相互接触的“红色”和“绿色”细胞。

接下来,使用“Crop”按钮选择一条垂直于细胞间接触的扫描路径。通过“Zoom”调整使像素大小达到50至200纳米,并在“Scan Mode”中选择“Line”。将“Frame Size”设置为128乘以1像素。将“Scan Speed”设为允许的最大值,然后将扫描循环次数设置为100,000至500,000。

随后,选择适当的激光功率。将检测器设置为“光子计数”模式。按下“开始实验”以开始采集。

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最后更新:15 八月 2026