双分子荧光互补耦合光激活定位显微镜

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在其活性形式中,质膜相关 Ras 单体(一种鸟嘌呤核苷酸结合蛋白)招募 Raf,Raf 是一种非活性蛋白激酶,通过其 Ras 结合结构域与 Ras 结合。

这种结合产生功能性 Ras-Raf 复合物,触发下游信号传导过程。

为了可视化细胞内 Ras-Raf 相互作用,首先将基因工程细胞悬浮在腔室良好的载玻片中。这些细胞表达两种非荧光融合蛋白——一种包括通过其 N 端光激活荧光团的一半相连的 Ras,另一种是在其 C 端与同一荧光团的另一半融合的 Raf。

在细胞内,含 Ras 的融合蛋白停靠在质膜上并与含 Raf 的融合蛋白相互作用,将荧光蛋白的片段重构为完整的光活化荧光团。由于没有 Ras 和 Raf 结合,使两半荧光团保持分离。

将固定试剂添加到载玻片中。固定分子与蛋白质形成交联并稳定蛋白质复合物。

取出固定试剂并添加成像缓冲液。将载玻片放在用于光激活定位显微镜的荧光显微镜下,PALM。用高强度激光照射细胞,激活一小部分荧光分子。

每个纳米级、单荧光团标记的 Ras-Raf 复合物产生的随机发光荧光进行成像,可见为高分辨率荧光点。

要制备用于成像的样品,在 350 微升不含酚红的 DMEM 中,在 8 孔玻璃底腔室载玻片的每孔接种约5.5 x 10 4 个稳定表达细胞。使用含有戊二醛的新鲜多聚甲醛固定细胞,用PBS或成像缓冲液代替固定剂后,涡旋100纳米金颗粒,每孔添加35微升,用于在成像过程中跟踪阶段漂移。

接近显微镜并对 405 和 561 纳米激光器进行功率。此时保持百叶窗关闭,确保 561 纳米二向色镜和陷波滤光片就位。打开图像采集软件。

打开

EMCCD 相机并让其冷却,并将曝光时间设置为 100 毫秒,将 EMCCD 增益设置为适当的值。向物镜中加入浸油,并将样品固定在显微镜载物台上。接下来,使用明场或 561 纳米激光器使样品聚焦。

对于 Ras 和其他膜蛋白的成像,请使用具有 1.49 数值孔径的 60 倍复消色差 TIRF 物镜,并将显微镜置于 TIRF 配置中。

调整激发激光器,使其在撞击 TIRF 物镜的后孔径时偏离中心,这将导致激光在到达盖玻片缓冲界面时偏转。不断调整激光入射位置,直到达到临界角并且激光被反射回来。

搜索一个细胞以对多个金颗粒进行成像。然后,设置一个感兴趣的区域,包围细胞或细胞的区域和金颗粒。

如果由于高表达水平而已经发生足够的激活,请在关闭 405 纳米激光和打开 561 激光的情况下开始采集。否则,以最低出厂功率设置打开 405 纳米激光器,并逐渐增加它,直到每帧有数十个分子,或使单个分子分离良好。

随着数据采集的继续,逐渐增加 405 纳米激光功率,以保持光斑密度大致恒定。继续图像采集,直到高 405 功率不再启动任何激活事件。

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Last updated: 18 July 2026