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一种嵌合型致癌融合蛋白包含RNA结合蛋白的N端低复杂性结构域(LCD)与转录因子蛋白的DNA结合结构域(DBD)相融合。这些蛋白可形成蛋白凝聚体,招募RNA聚合酶II,从而驱动肿瘤发生。
为了通过单分子成像观察蛋白质凝聚体的组装过程,首先准备一个DNA流动池——一种带有进样和出样端口的熔融石英玻璃载片。流动池表面涂覆有生物素化的脂双层,以保护表面,并设有锯齿状屏障。
将其连接至微流控系统。引入链霉亲和素溶液,该分子可与其高亲和力配体生物素在脂质层上结合。注入带有生物素标记的双链λ DNA,该DNA包含多个融合蛋白结合序列的重复片段。脂双层上的链霉亲和素将与DNA上的生物素结合,从而将λ DNA固定在脂双层上。
用适当的缓冲液冲洗。其流动的流体动力使锚定的DNA分子伸展,从而让DNA分子像幕布一样悬挂在障碍物上方,形成DNA帘。
将流动池置于荧光显微镜下。注入DNA结合性绿色荧光染料溶液,随后注入与蛋白结合性品红色荧光染料标记的融合蛋白溶液。 通过 其LCD结构域,并孵育。
标记的融合蛋白结合到λ DNA上的靶序列,沿DNA长度形成缩合物。激发后,结合在DNA和蛋白质上的荧光基团发出荧光。
融合蛋白缩合物在绿色荧光标记的双链DNA上呈现为紫红色斑点。
为了在DNA幕上成像EWS-FLI1凝聚体的形成,打开成像软件,在明场下找到九个之字形图案的位置并进行标记。然后以每分钟0.2毫升的流速开启流动,用双链DNA染料对DNA染色10分钟。
接下来,用成像缓冲液将mCherry-EWS-FLI1蛋白稀释至100纳摩尔浓度,总体积为100微升。然后,使用100微升玻璃注射器通过阀门上样,将流速调整至0.4毫升每分钟。
打开488纳米激光器后,预先扫描每个区域以检查DNA分布状态,并选择DNA分子分布均匀的区域。然后,将488纳米激光器的激光功率设为10%,561纳米激光器的激光功率设为20%,并使用功率计测量棱镜附近的实际激光功率。
使用488纳米和561纳米激光器同时以每两秒一次的间隔开始采集图像。60秒后,将阀门从手动模式切换至注射模式,使成像缓冲液将蛋白质样品冲洗至流动池中。
为了去除游离的 EWS-FLI1,仅开启 561 纳米激光器,用成像缓冲液持续清洗流动池 5 分钟。然后停止流动,在 37 摄氏度下孵育 10 分钟。
10 分钟后,以 0.4 毫升/分钟的流速启动流动,使 DNA 延伸,并在不同帧之间以每 2 秒一次的频率采集图像,以获得 EWS-FLI1 凝聚体形成的高通量数据。