测量HA抗体介导的Fc效应功能的激活

0 次观看3:03 分钟 • July 8th, 2025

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取针对流感病毒血凝素(HA)的抗体进行连续稀释,HA 是一种由球状头部和茎状结构组成的糖蛋白。

将稀释后的抗体加入表达表面结合型 HA 的转染哺乳动物细胞中。抗体与 HA 茎区结合,形成免疫复合物。

引入表达Fc受体并在转录因子NFAT调控下编码荧光素酶报告基因的工程化T细胞。

孵育过程中,与HA结合的抗体与Fc受体结合,而HA头部与唾液酸结合,从而触发T细胞活化并增加胞质钙离子浓度。

这种活化会启动信号级联反应,导致NFAT去磷酸化,进而触发其向细胞核的转位。

NFAT 结合到基因组中的响应元件,驱动荧光素酶的表达。

加入一种可穿透细胞的生物发光底物。荧光素酶氧化该底物,产生信号。

随着抗体浓度降低,发光强度减弱,证实了HA茎部特异性抗体介导的T细胞活化。

为了评估特定目的抗体靶向表达血凝素的细胞的能力,将病毒感染的细胞培养物中的上清液替换为25微升抗体依赖性细胞介导的细胞毒性(ADCC)检测培养基。

接下来,在另一个96孔板中,根据示意图,从每毫升10微克开始,用新鲜的ADCC培养基对目标抗体进行4倍系列稀释,每个浓度设三个复孔,同时注意设置背景对照和无抗体对照。

当所有抗体稀释完成后,将25 µL稀释后的抗体转移至实验细胞板中相应的孔内,并将该板放入细胞培养孵育箱中。15分钟后,每孔加入7.5 × 10⁴个经修饰的效应Jurkat细胞(表达相应的Fc受体),使用25 µL ADCC培养基加入,使每孔ADCC培养基的终体积为75 µL。

将培养板放回细胞培养箱中孵育6小时,并在孵育的最后1小时期间,于37摄氏度水浴中解冻荧光素酶底物缓冲液。当缓冲液准备好后,向除背景对照孔以外的所有孔中加入75 µL荧光素酶底物缓冲液,并在发光仪上读取培养板。随后可计算转染或感染细胞培养物中抗体依赖性细胞介导的细胞毒性作用的诱导倍数。

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最后更新:15 八月 2026