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首先用二甲胂酸钠缓冲液清洗固定的心脏切片,以稳定组织结构。将切片浸入四氧化锇溶液中,对膜脂质进行染色。
使用乙酸钠处理,以维持染色的最佳 pH 值。
加入醋酸铀对生物分子进行染色,以在显微镜观察时提供更好的对比度。
用逐渐升高的乙醇浓度对组织进行脱水,然后使用丙酮。
将组织包埋于树脂中,制备超薄切片,并将其转移至显微镜载网上。
加入高碘酸钠以去除四氧化锇,从而暴露细胞蛋白。
该化合物还可氧化糖蛋白,产生反应性醛基,后者可通过甘氨酸处理予以中和。
加入封闭缓冲液,防止非特异性抗体结合。
加入针对目标蛋白的特异性一抗,随后加入生物素标记的二抗。
加入与生物素结合的链霉亲和素偶联量子点。
在电子显微镜下,量子点标记的区域表现出更高的对比度,有助于目标蛋白的精确定位至亚细胞结构。
固定24小时后,用0.1摩尔的卡可基酸钠缓冲液洗涤组织两次,每次20分钟。将组织从卡可基酸钠缓冲液中取出,置于2%四氧化锇溶液中,室温下浸泡4小时。
锇酸处理后,将组织置于2%醋酸钠溶液中,室温下浸泡10分钟。接着,将组织置于2%醋酸铀酰溶液中,室温下染色1小时。醋酸铀酰染色后,依次通过梯度浓度的乙醇和丙酮对组织进行脱水。
按照文稿中所述方法,将脱水组织包埋于低粘度环氧树脂中。将组织放入8毫米的微型模具中的新鲜树脂内,在70摄氏度下过夜固化包埋的组织。使用45度超薄切片刀找到目标区域后,制备呈淡金色的超薄切片。将这些超薄切片置于200目铜网的哑面。
通过在干净的石蜡膜上滴加20微升高碘酸钠蚀刻液来开始抗原去封闭。将带有组织切片的干燥载网置于蚀刻液滴中,在室温下孵育30分钟。将经过蚀刻的组织切片置于一滴蒸馏水中清洗60秒。
将切片载网置于一滴 0.05 摩尔的甘氨酸溶液中,室温孵育 10 分钟以封闭残余醛基。用滤纸轻轻吸去载网边缘的残余甘氨酸溶液。将切片载网放入 10 至 20 微升封闭液中,室温孵育 25 分钟。
用滤纸吸去载网边缘的液体,将载网置于抗体稀释液中,室温孵育10分钟以进行预处理。将载网放入湿盒中,与一抗共同孵育1小时30分钟。吸去液体使载网干燥,再用抗体稀释液洗涤载网两次,每次5分钟。
在湿盒中,将载网片与生物素化二抗于室温孵育1小时。载网片用滤纸吸干后,用抗体稀释液洗涤载网片两次,每次5分钟。随后在湿盒中,将载网片与市售的链霉亲和素偶联量子点(streptavidin-conjugated QD)于室温孵育1小时,孵育过程中用铝箔覆盖湿盒以避光。用滤纸吸干载网边缘后,将载网片置于水滴上洗涤2分钟,再用滤纸吸干载网边缘。