0 次观看 • 3:15 分钟 • July 8th, 2025
取自器官捐献者的白细胞抗原(HLA)序列制备的肽阵列,该阵列包含固定在纤维素膜上的不同肽段。
每种肽至少含有一个供体与受体HLA序列之间的氨基酸错配,代表了一种可能引发抗体介导器官排斥的表位。
使用封闭缓冲液处理,以防止非特异性抗体结合。
加入器官移植后采集的受者血清,其中含有同种异体抗体。
这些针对供体 HLA 产生的抗体,会结合到其靶向的表位上。
加入与同种抗体结合的辣根过氧化物酶标记的二抗。
加入化学发光底物和过氧化氢。过氧化物酶利用过氧化氢氧化底物,产生发光。
扫描膜以获得图像。
加入缓冲液以洗脱结合的抗体。用移植前受体血清重新孵育,并获取图像。
与移植前图像相比,移植后图像上的暗斑表示可引发异体抗体反应的供体特异性 HLA 表位。
当完成阵列合成后,使用20毫升含5%脱脂奶粉的TBST缓冲液(Tris缓冲盐水加0.1% Tween 20)在摇床上室温封闭膜,封闭时间应适当。随后,用20毫升新鲜TBST缓冲液洗涤膜三次,每次5分钟。接着,将膜与20微升受体粗血清溶于含2.5%脱脂奶粉的TBST缓冲液中,在室温下孵育2至3小时。
孵育结束后,用洗涤液洗膜3次,每次10分钟,然后将膜与辣根过氧化物酶标记的山羊抗人IgG二抗在室温下孵育2小时。
用 TBST 进行三次 10 分钟洗涤,去除未结合的二抗,然后将膜置于 5 毫升新配制的鲁米诺溶液和 5 毫升过氧化物溶液中孵育显影。一分钟后,在合适的成像仪上观察增强化学发光信号。
保存显影后的图像后,将膜置于37摄氏度下,用20毫升商用洗脱缓冲液孵育20分钟,随后在TBST中清洗三次,每次10分钟。然后按照前述方法,用同一患者在不同时间点采集的血清样本对膜进行封闭、重新孵育和检测。
本文介绍了一种用于鉴定可能导致移植后抗体介导器官排斥反应的供体特异性 HLA 表位的方法。该技术利用源自 HLA 序列的肽阵列,检测受体血清中的同种异体抗体。
该多肽阵列方法能够精确定位驱动抗体介导器官排斥反应的供体特异性 HLA 表位,有助于在移植免疫学中进行机制层面的风险评估。通过提供同种抗体反应性的定量、表位水平解析,该方法增强了临床前和临床移植研究中的靶点验证能力及预测可信度。该策略为免疫调节和移植物耐受策略的治疗开发中的风险调整决策提供了依据。
该方法适用于从发现到转化的研究连续体,可支持早期免疫风险评估,并指导耐受性或脱敏疗法的先导化合物筛选。
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最后更新:29 八月 2026