使用夹心 ELISA 测定疫苗中的免疫原性糖蛋白含量

0 次观看5:42 分钟 • July 8th, 2025

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首先使用涂有狂犬病、免疫原性糖蛋白特异性单克隆抗体和封闭剂的钝化检测板,以防止非特异性相互作用。

引入糖蛋白含量降低的连续稀释参考和测试狂犬病疫苗。密封板以防止污染。

孵育过程中,免疫原性糖蛋白通过特定的抗原位点包被的单克隆抗体相互作用。

孵育后,取出薄膜,吸出上清液,并清洗板。

与酶偶联的糖蛋白特异性单克隆抗体叠加,这些抗体与糖蛋白上的不同抗原位点结合,形成免疫复合物。

加入含有底物和显色剂的溶液。当底物与酶相互作用时,它会导致显色原氧化,从而改变溶液颜色。

添加终止液以灭活酶。

测量吸光度并使用参考疫苗值生成参考曲线。

确定吸光度与参考疫苗稀释液的糖蛋白含量之间存在线性关系的区域。然后,根据该区域内的吸光度推断测试疫苗稀释液的糖蛋白含量。

要清洗刀片,请向每个孔中加入 300 微升洗涤缓冲液。然后,小心地吸出并将孔内容物转移到含有2.6%次氯酸钠溶液的受体中。再重复此洗涤过程五次,以广泛清洗敏化板。

之后,将微孔板倒置,在室温下在一张吸水纸上干燥一分钟。在一毫升蒸馏水中复溶参考疫苗,使狂犬病病毒糖蛋白的最终浓度为每毫升 10 微克。在稀释剂中制备10倍稀释的复溶参考疫苗,以达到每毫升1微克的狂犬病病毒糖蛋白浓度。

接下来,在稀释剂中对该参考疫苗进行六次连续两倍稀释,如文本方案表一所述。将 200 微升稀释剂分配到一份孔中作为空白对照,每孔分配 200 微升用于每个参考疫苗稀释液,一式两份。

然后,在稀释剂中制备被测疫苗的10倍稀释液,并在稀释剂中制备七次双倍连续稀释液,如文本方案表二所述。将 200 微升每种测试疫苗稀释液一式两份分配到微孔板的每个孔中。用胶膜覆盖微孔板,在37摄氏度下孵育一小时。

之后,取下薄膜,小心吸出,并将每个孔的内容物转移到含有2.7%次氯酸钠溶液的受体中。要洗涤板,请向每个孔中加入 300 微升洗涤缓冲液。小心地吸出,并将每个孔的内容物转移到含有2.6%次氯酸钠溶液的受体中。

再重复洗涤过程五次以去除未结合的抗原。并保存与包被抗体结合的 G 蛋白三聚体。将洗净的微孔板倒置,在室温下在一张吸水纸上晾干一分钟。然后,将 200 微升推荐稀释液中的过氧化物酶标记的 D1 单克隆抗体稀释液分配到每个孔中。

胶膜覆盖微孔板,在37摄氏度下孵育一小时。接下来,去除薄膜,小心地吸出,并将每个孔的内容物转移到含有 2.6% 次氯酸钠溶液的受体中。要洗涤微孔板,请向每个孔中加入 300 微升洗涤缓冲液。

小心地吸出,并将每个孔的内容物转移到含有2.6%次氯酸钠溶液的受体中。再重复此洗涤过程五次以去除未结合的过氧化物酶标记的抗体。倒置洗液微孔板,在室温下在一张吸水纸上晾干一分钟。

接下来,将 200 微升底物显色剂溶液分配到每个孔中。用薄膜密封微孔板,在室温下避光孵育30分钟。然后,向每个孔中加入 50 微升终止溶液以停止反应。

小心地擦拭微刀片的底部,并将其放入分光光度计中。确定所有所用孔的 492 纳米处的光密度。将此数据收集在电子表格文件中进行分析。之后,为参考疫苗曲线和光密度值创建图,如文本协议中所述。

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最后更新:1 八月 2026