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从一支含有细胞来源的膜结合颗粒的试管开始,这些颗粒称为细胞外囊泡(EVs),具有独特的抗原组成。
引入含有与荧光标记的Fab片段偶联的捕获抗体的磁性纳米颗粒(MNPs)。
孵育以促进磁性纳米颗粒(MNPs)与细胞外囊泡(EVs)特定抗原之间的相互作用,形成MNP-EV复合物。
加入免疫球蛋白G以阻断Fc结合位点,然后引入荧光标记的检测抗体,对捕获颗粒上的其他抗原进行染色。
将此混合物上样至置于磁力分离器中的预清洗磁性柱中。
磁场将磁性纳米颗粒捕获的物质保留在柱内。更换缓冲液以去除未结合的抗体。
从磁力分离器中取出柱子,用缓冲液洗脱磁性纳米颗粒捕获的物质,并进行固定以保持其结构完整性。
通过流式细胞术分析免疫捕获的颗粒;来自染色抗原的不同荧光信号与细胞外囊泡(EVs)独特的抗原特性相关。
首先,在一个1.5毫升的微量离心管中,按每种条件加入60 µL磁性纳米颗粒(MNPs)和5 µL针对目标捕获抗体同型特异的标记Fab片段。在室温下持续混匀孵育30分钟。然后,用300 µL磷酸盐缓冲液(PBS)预润湿一个100k超滤管,并将其放入微量离心机中离心。
离心结束后,使用100k柱纯化标记的复合物,随后再次进行离心,并将沉淀重悬于200微升新鲜PBS中。为捕获目标颗粒,将抗体标记的磁性纳米颗粒(MNPs)与目标颗粒在适当的孵育时间和温度下共同孵育。
接下来,使用相应物种的IgG抗体封闭任何非特异性FC结合位点,轻轻涡旋混匀,并在室温下孵育颗粒溶液3至5分钟。然后,向颗粒中加入制造商推荐浓度的各检测抗体,或向同型对照样品中加入同型对照抗体,在室温下继续孵育20分钟。
为了将磁性纳米颗粒(MNP)捕获的颗粒与未结合的抗体分离,首先将磁性分离柱置于分离磁铁中,并用500微升洗涤缓冲液预润湿柱子。让洗涤缓冲液流过柱子。然后,将MNP颗粒复合物加入柱中,收集穿流液至废液容器中。
当全部复合物溶液流经层析柱后,用500微升洗涤缓冲液洗涤层析柱三次。随后,将层析柱转移至一支12 mm × 75 mm的试管中。三分钟后,加入200微升PBS,使磁珠依靠重力自然洗脱。
当所有 PBS 流经层析柱后,向管中加入 200 微升新鲜 PBS,并用 200 微升 4% 多聚甲醛固定颗粒。接下来,将经 0.22 微米滤膜过滤的 PBS 上样至流式细胞仪,并调节细胞仪的 PMT 电压,直至过滤后的 PBS 显示零至极少的事件信号。然后,使用低流速运行 MNP 捕获的颗粒,并在标准的 0.2 微米鞘液滤膜后串联一个 0.04 微米的在线滤膜,以进一步消除任何假阳性信号事件。