一种用于研究海马神经元中谷氨酸受体转运的体外技术

0 次观看5:27 分钟 • July 8th, 2025

取三份盖玻片上的海马神经元培养样本。

加入一抗以标记细胞表面表达的谷氨酸受体。

向第二和第三份样品中加入条件培养基,以诱导抗体结合受体的内吞作用。

在第三个样本中,加入Fab片段以阻断未内吞抗体上的表位。

加入抑制剂以阻断受体的内吞作用,同时允许受体循环回到细胞表面。

在所有样品中,固定细胞并加入封闭液以防止非特异性标记。&

加入荧光标记的二抗,以标记表面结合受体上的初级抗体,包括被循环利用的初级抗体。

透化细胞膜。

再次向第一个样本中加入一抗,以标记预先存在的内吞受体。

向所有样品中加入不同荧光标记的二抗,以标记内吞的受体结合的一抗,从而区分内吞的受体与细胞表面结合的受体。

使用共聚焦显微镜,定量不同处理条件下表面表达、内吞和再循环的受体。

开始此操作时,将盖玻片细胞面向上转移至覆有石蜡膜的托盘中,以节约试剂并便于操作。将用过的培养基保存并在 37 摄氏度条件下维持,用于后续的孵育和洗涤步骤。

将细胞与用条件培养基稀释的一抗在室温下孵育15分钟。随后,使用真空移液器小心吸除含抗体的培养基,并用条件培养基洗涤细胞三次。

若研究表面受体与细胞内受体的表达情况,请在此步骤后按照文字版方案中的说明用多聚甲醛固定细胞。将细胞维持在不含抗体的条件培养基中,并放回37摄氏度的培养箱内,以允许受体发生内化。若研究内化过程,请在此步骤后按照文字版方案中的说明用多聚甲醛固定细胞。

为了阻断与未内化的表面表达受体结合的初级抗体上的表位,将细胞与用条件培养基稀释的非偶联Fab抗IgG抗体片段在室温下孵育20分钟。随后,用条件培养基洗涤细胞三次。将洗涤后的孔板与含有80 µM dynasore的条件培养基在37 °C下孵育,以允许内化受体的再循环。

完成对活细胞的修饰后,用 PBS+ 洗涤细胞一次。向细胞中加入含 4% 多聚甲醛和 4% 蔗糖的 PBS 溶液,在室温下于通风橱中孵育 7 至 8 分钟以固定细胞。随后,用普通 PBS 洗涤细胞三次。向细胞中加入含 10% 正常山羊血清的 PBS 溶液,在室温下孵育 30 分钟,以阻断非特异性结合位点。

接下来,将细胞与用含3% NGS的PBS稀释的荧光标记二抗在室温下孵育一小时,以标记已结合一抗的受体。随后,用PBS洗涤细胞三次。

为了开始标记细胞内受体,加入含有0.25% Triton-X的PBS溶液,在室温下孵育5至10分钟,以通透细胞。随后,用10% NGS在室温下封闭30分钟。若需区分表面与总受体表达,将细胞与之前使用的相同一抗在含3% NGS的PBS中稀释,室温孵育1小时,以标记细胞内受体。

接着,用 PBS 洗涤细胞三次。在室温下,用含 3% NGS 的 PBS 稀释荧光标记的二抗,孵育细胞 1 小时进行标记。随后,再用 PBS 洗涤细胞三次。首先,将盖玻片细胞面朝下,轻轻置于 12 至 15 微升适当的封片剂上,以完成细胞封片。然后,在相应的共聚焦显微镜上观察细胞,并按照文本方案中所述进行细胞分析。

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最后更新:29 八月 2026