0 次观看 • 5:27 分钟 • July 8th, 2025
取三份盖玻片上的海马神经元培养样本。
加入一抗以标记细胞表面表达的谷氨酸受体。
向第二和第三份样品中加入条件培养基,以诱导抗体结合受体的内吞作用。
在第三个样本中,加入Fab片段以阻断未内吞抗体上的表位。
加入抑制剂以阻断受体的内吞作用,同时允许受体循环回到细胞表面。
在所有样品中,固定细胞并加入封闭液以防止非特异性标记。&
加入荧光标记的二抗,以标记表面结合受体上的初级抗体,包括被循环利用的初级抗体。
透化细胞膜。
再次向第一个样本中加入一抗,以标记预先存在的内吞受体。
向所有样品中加入不同荧光标记的二抗,以标记内吞的受体结合的一抗,从而区分内吞的受体与细胞表面结合的受体。
使用共聚焦显微镜,定量不同处理条件下表面表达、内吞和再循环的受体。
开始此操作时,将盖玻片细胞面向上转移至覆有石蜡膜的托盘中,以节约试剂并便于操作。将用过的培养基保存并在 37 摄氏度条件下维持,用于后续的孵育和洗涤步骤。
将细胞与用条件培养基稀释的一抗在室温下孵育15分钟。随后,使用真空移液器小心吸除含抗体的培养基,并用条件培养基洗涤细胞三次。
若研究表面受体与细胞内受体的表达情况,请在此步骤后按照文字版方案中的说明用多聚甲醛固定细胞。将细胞维持在不含抗体的条件培养基中,并放回37摄氏度的培养箱内,以允许受体发生内化。若研究内化过程,请在此步骤后按照文字版方案中的说明用多聚甲醛固定细胞。
为了阻断与未内化的表面表达受体结合的初级抗体上的表位,将细胞与用条件培养基稀释的非偶联Fab抗IgG抗体片段在室温下孵育20分钟。随后,用条件培养基洗涤细胞三次。将洗涤后的孔板与含有80 µM dynasore的条件培养基在37 °C下孵育,以允许内化受体的再循环。
完成对活细胞的修饰后,用 PBS+ 洗涤细胞一次。向细胞中加入含 4% 多聚甲醛和 4% 蔗糖的 PBS 溶液,在室温下于通风橱中孵育 7 至 8 分钟以固定细胞。随后,用普通 PBS 洗涤细胞三次。向细胞中加入含 10% 正常山羊血清的 PBS 溶液,在室温下孵育 30 分钟,以阻断非特异性结合位点。
接下来,将细胞与用含3% NGS的PBS稀释的荧光标记二抗在室温下孵育一小时,以标记已结合一抗的受体。随后,用PBS洗涤细胞三次。
为了开始标记细胞内受体,加入含有0.25% Triton-X的PBS溶液,在室温下孵育5至10分钟,以通透细胞。随后,用10% NGS在室温下封闭30分钟。若需区分表面与总受体表达,将细胞与之前使用的相同一抗在含3% NGS的PBS中稀释,室温孵育1小时,以标记细胞内受体。
接着,用 PBS 洗涤细胞三次。在室温下,用含 3% NGS 的 PBS 稀释荧光标记的二抗,孵育细胞 1 小时进行标记。随后,再用 PBS 洗涤细胞三次。首先,将盖玻片细胞面朝下,轻轻置于 12 至 15 微升适当的封片剂上,以完成细胞封片。然后,在相应的共聚焦显微镜上观察细胞,并按照文本方案中所述进行细胞分析。
本文介绍了一种研究海马神经元培养物中谷氨酸受体动态变化的实验方案。详细描述了利用共聚焦显微镜对标记、固定以及表面表达、内吞和再循环受体进行定量分析的方法。
该方法能够精确区分细胞表面与内化的谷氨酸受体群体,有助于在中枢神经系统疾病靶点验证中进行机制性风险排除。通过量化受体转运动态,可提高评估化合物对突触功能及神经元信号通路影响的预测可靠性。该方法通过阐明药理学或遗传干预条件下受体的行为特征,支持神经精神类疾病相关早期药物发现。
该技术适用于从靶点验证到先导化合物发现的整个研究流程,可提供机制性见解,为化合物的优化决策提供依据。
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最后更新:29 八月 2026