0 次观看 • 4:36 分钟 • July 8th, 2025
首先,组装经过预处理的微阵列检测芯片,芯片上含有针对多种蛋白质的特异性捕获抗体,形成不同的点阵。
将蛋白标准品的稀释液和预稀释的血清样本分别加入不同的孔中。这些稀释液可形成一系列蛋白浓度,以实现准确的定量分析。
孵育以促进蛋白质与抗体的结合。洗涤以去除未结合的蛋白质,拆卸玻片并干燥。
将检测玻片倒置放入快装装置中,该装置内含一张已复水的转移玻片,其上点样有与检测玻片相同位置对应的蛋白特异性生物素化检测抗体。
关闭装置并按压,使载玻片相互紧密贴合。这有助于将检测抗体转移至检测载玻片上的对应位点,从而最大限度地减少交叉反应性。
分开玻片,使检测抗体与结合的蛋白质相互作用,形成免疫复合物。
重新组装检测玻片,冲洗后加入荧光素标记的链霉亲和素,使其与生物素化的抗体结合。
使用扫描仪检测血清样本中不同位置的荧光信号点,以指示多种蛋白质的存在。将信号点的强度与标准品进行比较,以实现蛋白质的定量分析。
开始免疫测定前,将制备好的检测载玻片从冷冻保存状态中取出,放入密封袋中静置30分钟,使其升至室温。用含0.05%聚山梨酯-20的磷酸盐缓冲液(PBS)配制七种连续稀释的蛋白质溶液。在相同缓冲液中配制适当稀释的待测样品溶液。
将24孔硅胶垫圈夹紧在室温下的检测玻片上。将七种蛋白质稀释液分别加入某一列的八个孔中的七个孔内。将不含蛋白质、含0.05%聚山梨酯-20的PBS加入该列最后一个孔中。将样品溶液加入其余各孔中。
将载玻片在室温下以 450 RPM 振荡 1 小时,或在 4 摄氏度下振荡过夜。然后,用缓冲液洗涤载玻片三次。移除垫圈,并在氮气流下干燥载玻片。
接下来,将检测抗体转移玻片置于密封袋中,室温下静置30分钟,使其恢复至室温。然后,将玻片放入密闭湿盒中,在相对湿度为60%的条件下孵育20分钟,以重新水合芯片阵列。使用弹簧针将检测转移玻片正面朝上固定在卡扣装置中。
将检测玻片正面朝下放置在弹簧针上,并用直针校准玻片位置。关闭装置,将检测抗体弹片转移至检测玻片上。从装置中取出玻片,将检测玻片孵育一小时。
将24孔硅胶垫圈夹紧在载玻片上,并用缓冲液清洗载玻片三次。然后向每个孔中加入80 µL浓度为2.5 µg/mL的链霉亲和素荧光染料PBS溶液。以450 RPM的转速振荡孵育20分钟。
用含0.1%聚山梨酯-20的PBS溶液清洗载玻片三次,再用蒸馏水清洗一次。然后移除垫圈并干燥载玻片。使用荧光扫描仪扫描载玻片,并测量斑点信号强度。确定检测限和蛋白质浓度。
本文介绍了一种用于检测血清样本中多种蛋白质的微阵列实验的详细方案。该方法利用蛋白质特异性的捕获抗体和生物素标记的检测抗体,以实现对蛋白质浓度的精确定量。
这种快照芯片技术可实现无交叉反应的多重蛋白质检测,解决了生物标志物验证和检测方法开发中的一个关键难题。通过确保试剂精确转移且无污染,该技术可在血清等复杂的生物基质中对多个靶标进行可靠定量。该方法通过提供可重复的定量免疫分析数据,支持靶点验证和先导物筛选工作流程,从而提高早期发现阶段的预测可信度。
该方法可融入从早期靶点验证到先导物鉴定的整个发现流程,支持以假设为导向的蛋白质谱型分析,并为下游应用提供检测就绪的保障。
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最后更新:22 八月 2026