0 次观看 • 5:54 分钟 • July 8th, 2025
将小鼠肺组织碎块放入消化缓冲液中,在生理温度下孵育。
缓冲酶分解组织基质,使细胞松散。
吹打以解离细胞团块,并使用滤网过滤悬液,从而分离单细胞。
离心以去除含有组织碎片的上清液。用裂解缓冲液孵育细胞,以裂解红细胞。
离心以弃去含有细胞碎片的上清液。重悬细胞并转移至微孔板。
加入抗体以阻断 Fc 受体,防止背景染色。
加入针对先天免疫细胞(包括单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞、自然杀伤细胞、中性粒细胞、嗜酸性粒细胞)以及适应性免疫细胞(B淋巴细胞和T淋巴细胞)表面特定标记物的荧光标记抗体混合物。
固定并透化细胞。加入针对单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞和嗜酸性粒细胞的细胞内标志物的荧光标记抗体。
使用流式细胞术对标记的免疫细胞进行分类。
将肺组织转移至培养皿中,用两把精细的手术刀将其切碎,然后放入一个50毫升的锥形管中。加入5毫升消化缓冲液以冲洗培养皿,拧紧管盖,在37摄氏度、每分钟150转的振荡摇床上消化30分钟。加入10毫升冷的BSA缓冲液以终止反应。
消化后,使用18号针头混匀并溶解肺组织碎片。将70微米滤网置于新的50毫升锥形管上,然后将消化后的肺组织混合物转移至滤网中。
使用10毫升注射器活塞的橡胶端在滤膜上碾碎剩余的肺组织碎片,并用BSA缓冲液冲洗。将单细胞悬液在7摄氏度下以350 g 离心8分钟。弃去上清液,将细胞重悬于1毫升ACK裂解缓冲液中。使用1毫升移液器混匀悬液,并在室温下孵育90秒。
向反应混合物中加入10毫升冷BSA缓冲液,在4摄氏度下以350 g离心7分钟。弃去上清液。将沉淀重悬于染色缓冲液中,使用血细胞计数板对细胞进行计数。将细胞重悬至浓度为每毫升500万个细胞,用于表面染色。
将100万个细胞以每孔200微升的体积转移至96孔板中,在4摄氏度下以350 g 离心7分钟。通过将抗-16/32抗体用染色缓冲液稀释,制备流式细胞术封闭液。
将细胞重悬于50微升流式细胞术封闭液中,在4摄氏度或冰上孵育15至20分钟。然后向孔板中加入150微升染色缓冲液,并在4摄氏度下以350 g 离心5分钟。
通过将表面抗体稀释于染色缓冲液中来制备表面抗体溶液。将细胞重悬于50 µL表面抗体溶液中,在4°C避光孵育。然后用染色缓冲液洗涤细胞两次。
通过混合三份固定和透化稀释液与一份染色缓冲液,制备固定和透化缓冲液。每96孔板孔中加入50 µL预配制的缓冲液重悬细胞,在4 °C避光孵育20至25分钟。
用纯化去离子水稀释透化缓冲液,制备一倍浓度的透化缓冲液,并用其洗涤细胞。用1毫升透化缓冲液稀释制备细胞内抗体溶液。每96孔板孔中用50微升稀释后的细胞内抗体溶液重悬细胞,在4摄氏度避光孵育40分钟。
用透化缓冲液洗涤细胞,然后用染色缓冲液洗涤。最后一次洗涤后,将细胞重悬于200微升染色缓冲液中。在流式细胞仪上每样本至少采集150万个细胞。
本文详细介绍了一种利用流式细胞术从小鼠肺组织中分离和分析免疫细胞的实验方案。该方法包括组织消化、细胞裂解以及使用特异性抗体染色,以鉴定多种免疫细胞类型。
该方法可使生物制药研发团队对小鼠肺部的先天性和适应性免疫细胞群体进行定量分析,从而支持免疫学和呼吸系统疾病项目中的靶点验证和作用机制风险评估。通过提供可重复且适用于流式细胞术的单细胞悬液,该方法增强了临床前模型的预测可靠性,并为调节肺部免疫功能的候选治疗药物的推进或终止决策提供依据。本方案将免疫表型分析定位为在发现研究和转化研究工作流程中可扩展、可重复使用的通用技术平台。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物筛选直至临床前评估的整个发现流程,可提供化合物在肺组织中活性的免疫学背景信息。
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最后更新:29 八月 2026