一种体外鉴定小鼠肺部固有和适应性免疫细胞的方法

0 次观看5:54 分钟 • July 8th, 2025

将小鼠肺组织碎块放入消化缓冲液中,在生理温度下孵育。

缓冲酶分解组织基质,使细胞松散。

吹打以解离细胞团块,并使用滤网过滤悬液,从而分离单细胞。

离心以去除含有组织碎片的上清液。用裂解缓冲液孵育细胞,以裂解红细胞。

离心以弃去含有细胞碎片的上清液。重悬细胞并转移至微孔板。

加入抗体以阻断 Fc 受体,防止背景染色。

加入针对先天免疫细胞(包括单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞、自然杀伤细胞、中性粒细胞、嗜酸性粒细胞)以及适应性免疫细胞(B淋巴细胞和T淋巴细胞)表面特定标记物的荧光标记抗体混合物。

固定并透化细胞。加入针对单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞和嗜酸性粒细胞的细胞内标志物的荧光标记抗体。

使用流式细胞术对标记的免疫细胞进行分类。

将肺组织转移至培养皿中,用两把精细的手术刀将其切碎,然后放入一个50毫升的锥形管中。加入5毫升消化缓冲液以冲洗培养皿,拧紧管盖,在37摄氏度、每分钟150转的振荡摇床上消化30分钟。加入10毫升冷的BSA缓冲液以终止反应。

消化后,使用18号针头混匀并溶解肺组织碎片。将70微米滤网置于新的50毫升锥形管上,然后将消化后的肺组织混合物转移至滤网中。

使用10毫升注射器活塞的橡胶端在滤膜上碾碎剩余的肺组织碎片,并用BSA缓冲液冲洗。将单细胞悬液在7摄氏度下以350 g 离心8分钟。弃去上清液,将细胞重悬于1毫升ACK裂解缓冲液中。使用1毫升移液器混匀悬液,并在室温下孵育90秒。

向反应混合物中加入10毫升冷BSA缓冲液,在4摄氏度下以350 g离心7分钟。弃去上清液。将沉淀重悬于染色缓冲液中,使用血细胞计数板对细胞进行计数。将细胞重悬至浓度为每毫升500万个细胞,用于表面染色。

将100万个细胞以每孔200微升的体积转移至96孔板中,在4摄氏度下以350 g 离心7分钟。通过将抗-16/32抗体用染色缓冲液稀释,制备流式细胞术封闭液。

将细胞重悬于50微升流式细胞术封闭液中,在4摄氏度或冰上孵育15至20分钟。然后向孔板中加入150微升染色缓冲液,并在4摄氏度下以350 g 离心5分钟。

通过将表面抗体稀释于染色缓冲液中来制备表面抗体溶液。将细胞重悬于50 µL表面抗体溶液中,在4°C避光孵育。然后用染色缓冲液洗涤细胞两次。

通过混合三份固定和透化稀释液与一份染色缓冲液,制备固定和透化缓冲液。每96孔板孔中加入50 µL预配制的缓冲液重悬细胞,在4 °C避光孵育20至25分钟。

用纯化去离子水稀释透化缓冲液,制备一倍浓度的透化缓冲液,并用其洗涤细胞。用1毫升透化缓冲液稀释制备细胞内抗体溶液。每96孔板孔中用50微升稀释后的细胞内抗体溶液重悬细胞,在4摄氏度避光孵育40分钟。

用透化缓冲液洗涤细胞,然后用染色缓冲液洗涤。最后一次洗涤后,将细胞重悬于200微升染色缓冲液中。在流式细胞仪上每样本至少采集150万个细胞。

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最后更新:29 八月 2026