2013年3月29日
在小鼠中诱导实验性心肌梗死的手术操作首先在第三和第四肋骨之间进行左侧开胸,以暴露心脏前表面和左肺。随后结扎左冠状动脉,关闭胸腔,小鼠可自行恢复。
本实验的总体目标是在小鼠体内建立心肌梗死模型。首先沿腋中线做皮肤切口,随后通过第三与第四肋间左侧开胸术暴露心脏。
然后在左前降支动脉的近端进行结扎。最后关闭胸腔,将小鼠放回笼中使其自然恢复。最终可通过心电图或超声心动图来评估心肌梗死情况。
该方法的可视化演示至关重要,因为靠近左侧结扎冠状动脉的操作较难掌握。通过将结扎位置置于左侧开口稍下方,可确保充分的心肌梗死。但需注意避免穿刺左心耳,否则可能导致致命性出血。
手术开始时,通过吸入2%至5%的异氟烷对一只六周龄或更年长的小鼠进行麻醉。通过夹捏脚趾以确认动物已充分麻醉。待小鼠完全镇静后,将其转移至手术区域并放置于手术台上。
将其背部置于加热垫上。为维持37摄氏度的恒定体温,使用内径为0.2厘米的管路和含2%异氟烷的空气混合气体,通过异氟烷雾化室将小鼠固定在插管装置上。将导管插入小鼠的气管中。
剃除小鼠左侧心前区胸部的毛发,然后用碘伏消毒该区域,再用75%乙醇重复擦拭三次。同时使用无菌镊子将眼用软膏涂抹于小鼠眼睛表面。
沿腋中线做1.5厘米切口。该入路有助于后续进行超声心动图评估。由于这些小鼠年龄较小,使用剪刀而非手术刀,以避免损伤下方组织。
然后使用钝头血管镊,将胸壁上的胸骨前肌分离并牵开。在第三和第四肋之间行左侧开胸术,以暴露心脏前表面和左肺。进一步使用合适的眼睑拉钩牵开胸壁。
为了更好地使用牙科镊子和钝头剪刀进行观察和操作,需去除心包膜。接着,准备一根7-0号丝线及缝合针,用于动脉结扎。将缝合针穿过左冠状动脉下方,并在结扎线与动脉之间保留一层心肌组织,以完成左冠状动脉的结扎。
通过在第三和第四肋骨上各缝合一针来关闭胸腔。将异氟烷浓度降低至0.5%,并使用5-0的聚乙二醇酸缝线以三针缝合皮肤。术后镇痛给予每千克体重0.05毫克的丁丙诺啡腹腔注射。
最后,将小鼠放入温暖的笼子中使其自发恢复,并在饮水中提供每毫升0.6毫克的丁丙诺啡。术后24小时内需密切监测小鼠,以评估心肌梗死的影响。最佳的侵入性方法是在术后数天通过超声心动图评估心脏功能。
采用本方案,结扎左冠状动脉可诱导心肌缺血,累及约40%的左心室。这会导致心电图ST段发生显著改变,如以下代表性心电图所示,分别为结扎前和结扎后记录。心肌梗死前。
心电图记录的QRS波群较窄且持续时间短。心肌梗死后,明显的ST段抬高与QRS波群融合,使QRS波群比心肌梗死前记录的更宽、更高。为研究心肌梗死的影响,应在心肌梗死手术后数天通过超声心动图评估心脏功能。
此处显示的是来自假手术小鼠的超声心动图记录。与假手术小鼠中观察到的良好心肌收缩相比,在心肌梗死小鼠中。
心肌梗死(mi)后72小时,在收缩期可见左心室游离壁明显无运动。观看本视频后,您应充分理解该心肌梗死小鼠模型,并能够在您自己的实验室中成功建立该模型。
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本文介绍了一种在小鼠中诱导心肌梗死的外科手术方法,该方法包括左胸切开术和左前降支动脉结扎。手术后关闭胸腔,让小鼠自行恢复。
这种心肌梗死小鼠模型为评估心脏病理生理学和治疗干预提供了一个可重复的临床前系统。通过模拟人类缺血-再灌注损伤,该模型可在心血管药物发现过程中实现靶点验证和机制性风险降低。该模型有助于先导化合物的识别,并提高早期研发管线的预测可信度。
该模型可整合到从靶点验证到临床前药效测试的心血管研究工作流程中。