0 次观看 • 2:41 分钟 • July 8th, 2025
从一培养小鼠胚胎干细胞开始。
用缓冲液洗涤细胞,以去除培养基和细胞碎片。
加入酶混合液以使细胞从培养瓶表面脱落。
加入培养基以终止酶活性,并将细胞收集至离心管中。离心后弃去含有酶的上清液。
在无血清神经元培养基中重悬细胞。
将细胞接种到明胶包被的多孔板孔中。
孵育。胚胎干细胞会附着在明胶包被的表面。培养基中的成分,包括营养物质、生长因子和激素,可促进细胞增殖并形成单层细胞。
在此细胞密度下,胚胎干细胞可产生并释放最佳水平的生长因子和细胞因子。
这些分子可触发细胞内信号通路,促进胚胎干细胞分化为神经前体细胞。
将明胶与500毫升温的磷酸盐缓冲液(PBS)混合,并用适量该溶液覆盖细胞培养容器底部,使其刚好覆盖表面即可。在明胶包被的同时,用PBS将未达到汇合状态的小鼠胚胎干细胞培养物冲洗两次。然后,向培养物中加入1毫升解离试剂。
2至5分钟后,轻敲容器,使单层细胞脱落形成单细胞悬液,并用总共10毫升培养基和细胞解离试剂收集培养物。
将细胞转移至15毫升锥形管中,在离心机中离心沉淀。然后小心吸除上清液,将沉淀物重悬于10毫升预热的N2B27培养基中,沿管壁轻轻吹打以避免产生气泡。
现在,计数细胞并记录浓度,然后根据表格,用预热的 N2B27 培养基将细胞重悬至每孔每单位体积所需的细胞数量。接着,吸除培养容器中的明胶,接种细胞时不要晃动容器。
将培养物置于37摄氏度、5%二氧化碳的湿化培养箱中,每隔一至两天用新鲜的N2B27培养基更换培养液。
本文介绍了将小鼠胚胎干细胞分化为神经前体细胞的过程。该方案包括细胞解离、重悬以及接种至明胶包被的表面,以促进细胞的贴壁与生长。
从多能干细胞中建立可靠的神经前体细胞生成方法,有助于在神经退行性疾病靶点验证中进行机制性风险降低。这种无血清单层培养方法通过减少早期发现工作流程中的生物学变异,提高了预测可信度。该方法为中枢神经系统药物发现中的通路解析和先导化合物筛选提供了一个可扩展、可重复的系统。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物鉴定的整个发现过程,能够早期评估化合物对神经分化通路的影响。
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最后更新:29 八月 2026