0 次观看 • 3:33 分钟 • July 8th, 2025
从神经球培养物开始,即神经上皮前体细胞的悬浮细胞团。
将这些神经球转移至包埋片上。
移除培养基。向每个神经球加入一滴含有蛋白质和生长因子的细胞外基质。
孵育至基质凝固,将神经球包埋于其中。
现在,使用神经球培养基将包埋在基质中的神经球转移至含有神经球培养基的培养板中。
孵育。细胞外基质膜及其组分可促进神经上皮前体细胞分化为神经上皮细胞,这些细胞增殖并形成充满液体的管腔。
孵育后,将神经球转移至含有预热的脑类器官培养基的旋转烧瓶中。通过搅拌孵育以增强氧气和营养物质的扩散,促进细胞生长。
培养基中的生长因子和小分子抑制剂促进神经分化,并发育为特定脑区的细胞,形成成熟的脑类器官。
开始此操作时,使用无菌剪刀预先将2毫米规格的枪头剪裁后,用200微升移液器收集神经球。接着,将神经球放置在100毫米培养皿中的石蜡膜上,各神经球之间相距约5毫米,并小心尽可能去除残留的培养基。然后,在每个单独的神经球上加入一滴EHS基质。
将EHS基质液滴与神经球在37摄氏度下孵育15分钟。随后,用神经球培养基冲洗石蜡膜上的神经球,小心清洗。之后,将神经球继续孵育四天,并在第二天添加2毫升新鲜的神经球培养基。
在此步骤中,通过旋转烧瓶的侧臂向每个烧瓶中加入 100 毫升脑类器官培养基,并将培养基置于 37 摄氏度的培养箱中预热至少 20 分钟。然后确保所有神经球均已分离。若两个或多个神经球通过 EHS 基质相连,需使用手术刀切断连接的基质以进行分离。
设置搅拌程序为25转/分钟。小心地将嵌入EHS基质的神经球转移至含有100毫升类器官培养基的旋转培养瓶中。随后,将旋转培养瓶置于培养箱内的磁力搅拌平台上,在37摄氏度条件下培养14天。此为类器官培养的第0天。每周更换一次培养基,移除一半培养基后加入等量的新鲜培养基。
本文介绍了一种利用神经球和细胞外基质将神经上皮前体细胞分化为成熟脑类器官的方法。该过程包括将神经球包埋于基质中,进行孵育,并将其转移至旋转培养瓶中以促进生长。
由iPSCs衍生的人脑类器官为研究早期神经发育和疾病机制提供了具有生理相关性的系统。该体外方法能够在与疾病相关的特定人类细胞环境中实现靶点验证和表型筛选,从而支持在药物发现流程中进行机制层面的风险评估。该策略通过模拟特定脑区的分化过程及类似组织的结构特征,提高了针对中枢神经系统(CNS)治疗候选药物的预测可靠性。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物鉴定再到临床前评价的整个发现过程,为还原论检测与体内模型之间提供了与人类相关的桥梁。
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最后更新:22 八月 2026