使用金纳米棒刺激神经元细胞分化

0 次观看4:06 分钟 • July 8th, 2025

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从在细胞分化培养基中培养的神经细胞开始。

将金纳米棒加入培养基中。

孵育以让细胞通过称为内吞作用的过程吞噬纳米棒。

用激光刺激纳米棒。

激光束激发纳米棒上的表面电子。然后激发的电子返回基态,释放热能。

这种热量刺激神经细胞产生由称为 βIII-微管蛋白的特定细胞骨架蛋白支持的突起。

取出用过的培养基。

固定细胞。添加合适的洗涤剂使膜透化。

添加封闭剂以防止抗体的非特异性结合。

用靶向βIII-微管蛋白的一抗标记细胞。

添加与一抗相互作用的荧光标记二抗。

用蓝色荧光染料染色细胞核。

使用落射荧光显微镜,观察具有蓝色细胞核的红色细胞。

细胞的细长突起表明神经细胞分化。

T75烧瓶中的10毫升细胞培养基中生长NG108-15神经元细胞,随后在加湿气氛中以37摄氏度孵育。当细胞汇合 70% 至 80% 时,用温热、新鲜的培养基更换培养基。

之后,通过轻轻敲击汇合烧瓶的底部来机械分离细胞。将细胞悬液以600g离心5分钟,并将细胞沉淀重悬于2毫升温热的细胞分化培养基中。然后,将细胞接种在 96 孔板中,并加入 200 微升细胞分化培养基。

样品在37摄氏度下孵育一天。第二天,加入金纳米棒溶液并再孵育24小时。在此过程中,将激光器与单模光纤耦合,并用 FC 连接器端接。使用标准功率计测量输出激光功率。

在纳米棒孵育的第3天,将FC连接器固定到孔上,在室温下以不同的激光功率连续波照射样品和对照1分钟。第5天,从样品中取出细胞分化培养基,并用3.7%体积/体积甲醛溶液固定10分钟。

然后,以每体积 Triton X-100 的 0.1% 体积透化细胞 20 分钟。然后,向样品中加入每体积 3% 重量的 BSA 60 分钟,以阻断未反应的蛋白质结合位点。在4摄氏度下用抗β-3-微管蛋白标记样品过夜。

第二天,将细胞在黑暗中孵育 90 分钟,并使用适当的二抗。随后,用DAPI标记细胞核10分钟,然后使用至少20倍物镜用落射荧光或共聚焦显微镜对样品进行成像。根据二抗选择显微镜过滤器,选择DAPI过滤器以可视化细胞核。

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最后更新:15 八月 2026