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在立体显微镜下,将一个多电极阵列(MEA)放置于培养皿中。该多电极阵列由呈网格状排列的电极组成,包含两个独立区域。
向MEA中加入一滴血液血浆。将两片从大鼠胚胎获取的脊髓切片放置其中,腹侧相对。
加入凝血酶溶液,与血浆混合后进行孵育。凝血酶可诱导血浆凝固,形成一种生物支架,促进脑片在多电极阵列(MEA)上的黏附。
加入培养基并在振荡条件下孵育,促进切片之间细胞连接的形成并使其融合。
在体视显微镜下,通过切断切片间的组织连接来制造损伤。加入营养培养基并进行孵育。
孵育期间,神经元生长跨越损伤区域,连接脑片。
使用记录室,从脊髓切片中记录电活动,以评估其再生的功能性连接。
将一个含有包被微电极阵列的培养皿置于体视显微镜下。调节焦距使电极阵列清晰,并在电极阵列上居中放置一滴6微升的鸡血浆。使用小刮勺,小心地将两片脊髓切片腹侧相对地滑入血浆液滴中。
接下来,在鸡血浆液滴周围加入 8 微升凝血酶。然后,使用移液枪头小心混合并铺展鸡血浆与凝血酶的混合物。在鸡血浆与凝血酶混合物变得过于纤维状并开始凝固之前,吸除多余的液体。随后,盖上培养皿盖,将其放入湿化 chamber 中。将 chamber 置于 37 摄氏度的培养箱中孵育约 1 小时。
孵育后,小心向样品中加入10 µL营养培养基。盖上培养皿盖,将其放回孵育箱中继续孵育45分钟。接着,将每个多电极阵列培养装置放入滚筒管中,并加入3 mL营养培养基。 tightly 盖紧管盖,将滚筒管放入滚筒中。在37 °C的孵育箱中以1至2 RPM的速度旋转滚筒。
使用无菌橡胶尖头镊子,将多电极阵列培养组件从滚筒中取出,并置于体视显微镜下的培养皿中。调节组织至清晰对焦,确认两个脑片已融合。
接下来,固定装置使其稳定,并将手术刀片放入多电极阵列的槽沟内,靠近组织切片处。持刀方向应相对水平,然后抬起刀柄,同时使手术刀片保持在阵列的槽沟内,使刀片从刀根向刀尖方向滚动,从而切断覆盖在槽沟上的组织。如有必要,可用25号针尖切断任何残留的组织连接。操作时仅限于槽沟区域内,切勿触碰脆弱的边缘。
将多电极阵列培养组件放回滚筒培养管中,并向培养物中加入 3 毫升新鲜营养培养基。然后,将滚筒培养管放回培养箱中的滚筒上,于 37 摄氏度继续培养。
将多电极阵列培养装置安装到记录室中,并向阵列上加入约 500 微升细胞外溶液。然后将装置安装到显微镜上。等待 10 分钟使系统稳定,随后从每个活动检测电极记录 10 分钟的基础自发活动。