0 次观看 • 4:00 分钟 • July 8th, 2025
取源于人诱导性多能干细胞的拟胚体(EBs)。这些拟胚体由三个胚层组成。
将拟胚体转移至含有合适培养基的基质包被培养皿中,并进行培养。
基质使得EBs能够附着于培养皿上。
培养基中的生长因子和营养物质促进EBs的外胚层细胞形成呈环形排列的神经上皮细胞团,这种结构称为神经 rosette。
将莲座状片段切下并从培养皿上分离。
收集碎片并离心沉淀。
弃去上清液,并将沉淀的碎片重新悬浮。
使用移液器将片段上下吹打以使其解离。
将所需数量的细胞加入含有分化培养基的基质包被孔板中。
分化培养基的成分可促进神经上皮细胞转化为完全功能性的神经元和胶质细胞,即神经系统的主要细胞。
第二天,从预先准备好的60毫升培养皿中吸除标准基质包被液,加入5毫升完全神经上皮诱导培养基(NRI)。在体视显微镜下以4倍放大倍数操作,使用200微升移液器收集约50个悬浮的类胚体,并转移至一个已包被的培养皿中。随后,将培养皿置于37°C、5%二氧化碳条件下孵育。
次日,即分化程序的第三天,在10倍显微镜下检查培养皿,确保所有类胚体均已贴壁。随后,轻轻更换全部培养基,加入完全NRI培养基。每隔一天更换一次NRI培养基,直至第七天,此时应可见类玫瑰花环样的神经上皮样细胞聚集体。
第7天,使用移液器将100微升用培养基稀释的标准基质加入96孔板的每个孔中进行包被。第8天,在无菌条件下,于体视显微镜下以10倍放大倍数将类玫瑰花结状聚集体切割成小片段。
请注意,当用针接触时,类胚体容易从培养皿上脱落。此时,可用针尖对脱落的类胚体进行部分解离。如果类胚体仍部分附着,可使用 200 µL 移液器完成对类胚体碎片的彻底分离。
莲座状切片需要良好的手动操作技能和精确性,以避免切到非神经外胚层衍生物。
接下来,将莲座状碎片及其培养基收集到一个15毫升的锥形管中。用2毫升NRI培养基冲洗培养皿,以回收所有碎片。然后,在112 × g条件下离心莲座状碎片 g 一到两分钟。
吸去上清液后,用1毫升预热的不含钙和镁的1×DPBS轻轻重悬沉淀。轻轻吹打玫瑰花状碎片,使其部分解离。然后加入4毫升完全NRI培养基,使用台盼蓝和自动细胞计数仪进行细胞计数。
接下来,从96孔板中吸除标准基质包被液,并在NRI培养基中以每平方厘米约15,000个细胞的密度将细胞接种至各孔中。于37°C及5%二氧化碳条件下培养过夜。第10天,使用完全神经元分化培养基进行全量换液。
本文介绍了一种利用胚状体(EB)将人诱导性多能干细胞分化为神经元和胶质细胞的实验方案。该过程包括在基质包被的培养皿中培养胚状体,并使用神经上皮诱导培养基促进细胞分化。
该方案能够从诱导多能干细胞(iPSCs)可扩展地生成人类神经元和胶质细胞,提供一种与疾病相关的体外系统,用于神经毒性筛选和机制通路评估。通过产生能够重现人类神经系统生物学关键特征的混合神经细胞培养物,该方法支持神经退行性疾病项目中的早期靶点验证和先导化合物评价。该方法通过减少对动物模型的依赖并提高转化相关性,增强了临床前安全性测试的预测可信度。
该方法适用于早期发现阶段,可在先导化合物筛选及临床前药效学研究之前,用于在人类神经系统中验证靶点假设。
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最后更新:22 八月 2026