一种从人类胚胎干细胞生成脑类器官的技术

0 次观看4:25 分钟 • July 8th, 2025

取培养在支持性基质上的人类胚胎干细胞集落,或称 hESCs。

吸除培养基,加入降解基质的酶。

洗涤以去除酶。然后加入培养基,用移液器吹打使松动的细胞集落脱落,并将其分散成更小的细胞团簇。

将细胞簇转移至新鲜培养基中,孵育,使细胞簇形成球状聚集体。

让球体沉降并去除任何死细胞。

使用含有碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)的培养基孵育,以促进细胞增殖。

使用含有逐渐降低浓度bFGF的培养基进行补充,以促进细胞分化。

加入神经诱导培养基,促进人胚胎干细胞向神经干细胞(NSCs)分化,使细胞球转变为呈现神经玫瑰花环样结构的类器官。

添加抗生素以防止在长期培养过程中任何污染微生物的生长。

神经干细胞分化为神经元和胶质细胞,逐步将类器官发育成类似于大脑皮层的复杂结构。

将蛋白酶原液稀释至工作浓度,每6孔板的hESCs加入1毫升原液至5毫升DMEM或F12培养基中。吸除细胞培养液后,用蛋白酶溶液覆盖hESCs。将培养板放入培养箱中孵育10至15分钟,或直至细胞集落边缘开始变圆并从基质上分离,但尚未完全脱离。

倾斜培养板,吸除蛋白酶溶液,然后每孔加入2毫升DMEM或F12培养基,轻轻洗涤细胞三次。确保细胞集落仍附着在基质上。

因此,SL组织块的大小是否合适至关重要。一定要确保它们在dispase中消化适当的时间。如果时间过短,将很难冲洗下来并将其分离;如果时间过长,它们可能在洗涤步骤中就已脱落。

向每个孔中重新加入约 1 至 1.5 毫升新鲜的 mTESR 培养基,用温和的移液操作将培养板中的细胞冲洗至一个 50 毫升锥形管中,在培养板内反复吸打人胚胎干细胞(hESCs),直至其体积约为原始大小的 1/30。此时,细胞集落簇呈现为大小约 250 至 350 微米的片段。

将细胞转移至一个超低吸附T75培养瓶中,加入不含bFGF的mTESR培养基若干毫升。次日,倾斜培养瓶,使活细胞聚集于瓶角。若大量细胞已贴附于培养瓶底部,可用10毫升移液器将细胞转移至新的培养瓶中。

预计在最初几天内会有较高比例的死亡细胞。待细胞稳定后,吸除培养基和死亡细胞,保留约10毫升含有活细胞的培养基,并加入20毫升低浓度bFGF培养基,其中添加30纳克/毫升的bFGF。两天后检查细胞,大多数细胞应呈现健康且透亮的状态。

然而,如果超过三分之一的细胞呈现黑色,则倾斜培养瓶,弃去20毫升培养基,并加入20毫升添加了20纳克/毫升bFGF的低浓度bFGF培养基。第3天时,移除一半培养基,加入15毫升HSC培养基,并补充10纳克/毫升bFGF。

第5天,用50毫升神经诱导培养基更换一半的培养液。此后每隔一天,用神经诱导培养基更换一半的培养基。培养三周后,可根据需要向培养基中加入100倍浓度的青霉素-链霉素,使其终浓度为1倍。每隔一天更换一半的培养基。

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最后更新:29 八月 2026