0 次观看 • 4:25 分钟 • July 8th, 2025
取培养在支持性基质上的人类胚胎干细胞集落,或称 hESCs。
吸除培养基,加入降解基质的酶。
洗涤以去除酶。然后加入培养基,用移液器吹打使松动的细胞集落脱落,并将其分散成更小的细胞团簇。
将细胞簇转移至新鲜培养基中,孵育,使细胞簇形成球状聚集体。
让球体沉降并去除任何死细胞。
使用含有碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)的培养基孵育,以促进细胞增殖。
使用含有逐渐降低浓度bFGF的培养基进行补充,以促进细胞分化。
加入神经诱导培养基,促进人胚胎干细胞向神经干细胞(NSCs)分化,使细胞球转变为呈现神经玫瑰花环样结构的类器官。
添加抗生素以防止在长期培养过程中任何污染微生物的生长。
神经干细胞分化为神经元和胶质细胞,逐步将类器官发育成类似于大脑皮层的复杂结构。
将蛋白酶原液稀释至工作浓度,每6孔板的hESCs加入1毫升原液至5毫升DMEM或F12培养基中。吸除细胞培养液后,用蛋白酶溶液覆盖hESCs。将培养板放入培养箱中孵育10至15分钟,或直至细胞集落边缘开始变圆并从基质上分离,但尚未完全脱离。
倾斜培养板,吸除蛋白酶溶液,然后每孔加入2毫升DMEM或F12培养基,轻轻洗涤细胞三次。确保细胞集落仍附着在基质上。
因此,SL组织块的大小是否合适至关重要。一定要确保它们在dispase中消化适当的时间。如果时间过短,将很难冲洗下来并将其分离;如果时间过长,它们可能在洗涤步骤中就已脱落。
向每个孔中重新加入约 1 至 1.5 毫升新鲜的 mTESR 培养基,用温和的移液操作将培养板中的细胞冲洗至一个 50 毫升锥形管中,在培养板内反复吸打人胚胎干细胞(hESCs),直至其体积约为原始大小的 1/30。此时,细胞集落簇呈现为大小约 250 至 350 微米的片段。
将细胞转移至一个超低吸附T75培养瓶中,加入不含bFGF的mTESR培养基若干毫升。次日,倾斜培养瓶,使活细胞聚集于瓶角。若大量细胞已贴附于培养瓶底部,可用10毫升移液器将细胞转移至新的培养瓶中。
预计在最初几天内会有较高比例的死亡细胞。待细胞稳定后,吸除培养基和死亡细胞,保留约10毫升含有活细胞的培养基,并加入20毫升低浓度bFGF培养基,其中添加30纳克/毫升的bFGF。两天后检查细胞,大多数细胞应呈现健康且透亮的状态。
然而,如果超过三分之一的细胞呈现黑色,则倾斜培养瓶,弃去20毫升培养基,并加入20毫升添加了20纳克/毫升bFGF的低浓度bFGF培养基。第3天时,移除一半培养基,加入15毫升HSC培养基,并补充10纳克/毫升bFGF。
第5天,用50毫升神经诱导培养基更换一半的培养液。此后每隔一天,用神经诱导培养基更换一半的培养基。培养三周后,可根据需要向培养基中加入100倍浓度的青霉素-链霉素,使其终浓度为1倍。每隔一天更换一半的培养基。
本文介绍了一种将人类胚胎干细胞(hESCs)分化为神经干细胞(NSCs),并进一步分化为类似大脑皮层结构类器官的方法。该过程包括支持基质的酶降解、细胞聚团,以及使用特定培养基以促进细胞增殖和分化。
该方法能够从人胚胎干细胞(hESCs)实现人脑类器官的可扩展化生成,为神经治疗药物早期靶点验证提供了一个生理相关性较高的模型。通过生成具有神经元和胶质层的皮质样结构,该方法支持利用与人类相关的表型筛选对中枢神经系统(CNS)候选药物进行机制性风险评估。该策略在一个可重复、无血清的系统中模拟早期神经发育过程,从而提高临床前决策的预测可靠性。
该技术适用于从发现到临床前研究的连续过程,可在先导化合物优化之前利用人类神经系统进行靶点验证,并支持生成可用于后续筛选工作的、具备检测-ready状态的类器官。
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最后更新:29 八月 2026