0 次观看 • 3:52 分钟 • July 8th, 2025
取收获的转基因小鼠胸主动脉周围脂肪组织,其中含有表达荧光蛋白的脂肪来源干细胞,这些细胞起源于神经嵴细胞,即 NCCs。
加入消化液并切碎组织。
将切碎的组织连同消化液转移至离心管中。机械性地解离组织碎片。
孵育。培养基中的胶原酶消化组织的细胞外基质,释放出干细胞、脂肪细胞和成纤维细胞。
加入含血清的培养基以终止胶原酶活性。离心并弃去含有脂肪细胞的上清液。
用培养基重悬细胞,并过滤以去除聚集体。
将滤液离心并弃去上清液。用红细胞裂解缓冲液重悬细胞,以裂解红细胞。
加入含血清的缓冲液以终止裂解。离心后弃去上清液。
用缓冲液重悬细胞。
通过荧光激活细胞分选来分离荧光标记的干细胞。
分离的干细胞可用于进一步的实验。
将收获的脂肪组织转移至一个新的含有1毫升新鲜配制消化液的2毫升微量离心管中,使用手术剪将组织剪碎。将组织悬液转移至含有9毫升新鲜消化液的50毫升离心管中,用1毫升移液器反复吹打组织10次。
当获得均一溶液后,将试管置于37摄氏度、100转/分钟条件下孵育30至45分钟,每5至10分钟检查一次,以防止消化过度。当轻轻摇动试管可观察到淡黄色均一的脂肪组织溶液时,加入5毫升添加了10%胎牛血清的HDMEM终止消化。充分混匀后,离心脂肪组织样品。
基质血管细胞组分将呈现为棕褐色沉淀。用10毫升培养基重悬沉淀,并通过70微米细胞滤网过滤细胞悬液。
通过另一次离心收集细胞,并在5毫升红细胞裂解缓冲液中轻轻重悬沉淀。将悬液转移至15毫米离心管中。10分钟后,加入10毫升含1%胎牛血清的磷酸盐缓冲液进行两次离心,以终止反应。
第二次离心后,将沉淀物在冰上用 5 毫升培养基重悬,并通过最终离心收集细胞。然后,将细胞重悬于 5 毫升 FACS 缓冲液中进行计数。
在通过FACS根据标准方案分离后,将细胞以5 x 103 每平方厘米细胞数2 每个孔中的浓度,在37摄氏度、5%二氧化碳条件下,于含完全培养基的12孔培养板中培养20至24小时。次日,用37摄氏度的PBS洗涤细胞,并更换新鲜培养基继续培养。
本文介绍了一种从鼠主动脉周围脂肪组织中分离、培养并诱导神经嵴来源的脂肪源性干细胞(NCADSCs)进行脂肪生成分化的详细实验方案。该方法利用在神经嵴细胞中表达荧光蛋白的转基因小鼠,能够精确识别并分选NCADSCs,用于后续实验应用。
从小鼠胸主动脉周围脂肪组织中分离神经嵴来源的脂肪源性干细胞(NCADSCs),可实现对代谢性和血管疾病模型中靶点的有效验证。通过荧光标记和流式细胞分选(FACS)纯化,可建立一套可重复的系统,用于干细胞治疗的机制性风险评估。该方法通过确保细胞的同质性及谱系可追溯性,提高了临床前筛选结果的预测可靠性。
该分离流程适用于从早期发现到临床前研究的过渡阶段,可为下游的功能验证和先导化合物筛选提供明确的细胞输入材料。
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
最后更新:29 八月 2026