从小鼠主动脉周围脂肪组织中分离脂肪来源的干细胞

0 次观看3:52 分钟 • July 8th, 2025

取收获的转基因小鼠胸主动脉周围脂肪组织,其中含有表达荧光蛋白的脂肪来源干细胞,这些细胞起源于神经嵴细胞,即 NCCs。

加入消化液并切碎组织。

将切碎的组织连同消化液转移至离心管中。机械性地解离组织碎片。

孵育。培养基中的胶原酶消化组织的细胞外基质,释放出干细胞、脂肪细胞和成纤维细胞。

加入含血清的培养基以终止胶原酶活性。离心并弃去含有脂肪细胞的上清液。

用培养基重悬细胞,并过滤以去除聚集体。

将滤液离心并弃去上清液。用红细胞裂解缓冲液重悬细胞,以裂解红细胞。

加入含血清的缓冲液以终止裂解。离心后弃去上清液。

用缓冲液重悬细胞。

通过荧光激活细胞分选来分离荧光标记的干细胞。

分离的干细胞可用于进一步的实验。

将收获的脂肪组织转移至一个新的含有1毫升新鲜配制消化液的2毫升微量离心管中,使用手术剪将组织剪碎。将组织悬液转移至含有9毫升新鲜消化液的50毫升离心管中,用1毫升移液器反复吹打组织10次。

当获得均一溶液后,将试管置于37摄氏度、100转/分钟条件下孵育30至45分钟,每5至10分钟检查一次,以防止消化过度。当轻轻摇动试管可观察到淡黄色均一的脂肪组织溶液时,加入5毫升添加了10%胎牛血清的HDMEM终止消化。充分混匀后,离心脂肪组织样品。

基质血管细胞组分将呈现为棕褐色沉淀。用10毫升培养基重悬沉淀,并通过70微米细胞滤网过滤细胞悬液。

通过另一次离心收集细胞,并在5毫升红细胞裂解缓冲液中轻轻重悬沉淀。将悬液转移至15毫米离心管中。10分钟后,加入10毫升含1%胎牛血清的磷酸盐缓冲液进行两次离心,以终止反应。

第二次离心后,将沉淀物在冰上用 5 毫升培养基重悬,并通过最终离心收集细胞。然后,将细胞重悬于 5 毫升 FACS 缓冲液中进行计数。

在通过FACS根据标准方案分离后,将细胞以5 x 103 每平方厘米细胞数2 每个孔中的浓度,在37摄氏度、5%二氧化碳条件下,于含完全培养基的12孔培养板中培养20至24小时。次日,用37摄氏度的PBS洗涤细胞,并更换新鲜培养基继续培养。

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最后更新:29 八月 2026