$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
从成年大鼠脊髓室管膜下区组织开始,该区域富含神经干细胞/前体细胞。
将组织转移至含有木瓜蛋白酶和DNase的溶液中。
木瓜蛋白酶是一种蛋白水解酶,可切割组织的细胞外基质,而DNase则降解受损细胞释放的污染性DNA。
通过机械法解离组织以获得单细胞悬液。
将悬液转移至离心管中并进行离心。弃去上清液。用含有白蛋白和蛋白酶抑制剂的溶液重悬细胞。
白蛋白和抑制剂使木瓜蛋白酶失活。
将细胞悬液铺在含有白蛋白和蛋白酶抑制剂的溶液上。
各层之间的密度差异形成不连续的密度梯度。
离心以沉淀完整的细胞,而细胞膜碎片则保留在界面处。
弃去上清液。用培养基重悬细胞并进行接种。
生长因子选择性地促进神经干细胞/前体细胞的增殖,并使其聚集形成三维神经球。
开始分离大鼠神经干细胞时,使用显微剪将分离出的室管膜周围组织剪切成1立方毫米大小的组织块。接下来,通过向木瓜蛋白酶解离试剂盒中的木瓜蛋白酶小瓶中加入5毫升厄尔氏平衡盐溶液,来配制酶解离缓冲液。
将小瓶置于 37 摄氏度下 10 分钟,使木瓜蛋白酶完全溶解,溶液呈澄清状态。接着,向解离试剂盒中的 DNase 小瓶内加入 500 微升 Earle's 平衡盐溶液,并轻轻混匀。
向含有木瓜蛋白酶的小管中加入 250 微升 DNase 溶液,并轻轻混匀。接着,将约 0.2 克剪碎的组织加入小管中,将小管置于 37 摄氏度的摇床上反应 45 分钟至 1 小时。
孵育后,用10毫升移液管吹打混合物,以解离残留的组织块,得到浑浊的细胞悬液。将细胞悬液转移至无菌的15毫升锥形离心管中,于300 × g离心 g's 室温下孵育5分钟。
离心过程中,在15毫升锥形管中加入2.7毫升Earl's平衡盐溶液和300微升重悬后的卵黏蛋白抑制剂溶液,配制卵黏蛋白溶液。向卵黏蛋白溶液中加入150微升先前配制的DNase溶液,通过倒置试管混匀。
弃去沉淀细胞的上清液,并立即用稀释的脱氧核糖核酸酶-白蛋白抑制剂混合液重悬细胞沉淀。接着,通过向一个15毫升离心管中加入5毫升白蛋白抑制剂溶液来制备不连续密度梯度,然后使用5毫升移液器将细胞悬液轻柔且缓慢地铺加在白蛋白抑制剂溶液上方。
在室温下以 70 g 离心 6 分钟。离心结束后,弃去上清液,并将细胞沉淀重悬于 1 毫升预热的大鼠 EFH 培养基中,该培养基的配制方法见随附的文字版实验方案。
使用血细胞计数板对活细胞密度进行计数,并将细胞以每微升10个细胞的密度接种至T25培养瓶中的EFH培养基中。将培养瓶置于37°C、5%二氧化碳条件下培养,静置培养一周,避免细胞球发生聚集。