0 次观看 • 3:51 分钟 • July 8th, 2025
从一个包含神经细胞、非神经细胞和免疫细胞的小鼠脑组织开始,这些细胞位于脑的细胞外基质(ECM)中。
将组织切碎并重悬于培养基中。
将这些组织碎片转移至离心管中,并用胶原酶和DNase-I酶进行处理。
胶原酶消化细胞外基质(ECM),释放单个细胞,而脱氧核糖核酸酶-I(DNase-I)则降解游离DNA,防止细胞聚集。
然后,加入 EDTA 以灭活胶原酶。
加入培养基。离心并移除上清液。
向细胞沉淀中加入密度梯度溶液和培养基,形成低密度梯度层。
混合后,用高密度梯度溶液在下方铺垫该溶液,以建立密度差异。
低速离心以分离位于界面处的免疫细胞,较轻的细胞碎片位于上层,较重的神经元和胶质细胞位于底部。
移除上层,收集免疫细胞,并将其转移至另一支试管中。
离心并去除上清液,然后将细胞重悬于培养基中,形成单细胞悬液,用于后续实验。
将脑或脊髓组织连同培养基倒入100毫米的培养皿中,用镊子将组织移至底部。用无菌剃须刀片切碎脑组织,并将组织收集在培养皿底部。向培养皿中加入3毫升添加了10%胎牛血清(FCS)的RPMI培养基,然后使用10毫升移液管将组织在培养基中重悬,并转移至15毫升锥形管中。
向组织中加入 I 型胶原酶和 DNase I,将试管置于 37 摄氏度水浴中孵育 40 分钟。每 15 分钟颠倒混匀一次试管,以充分混合组织与酶。孵育后,向每管中加入 EDTA,使其终浓度为 0.01 摩尔,再将试管额外孵育 5 分钟,以灭活胶原酶。
向每根试管中加入9毫升添加了10% FCS的RPMI,然后在4摄氏度下以450 g离心5分钟。使用带有真空装置的巴斯德吸管吸取上清液,注意不要触碰细胞沉淀。
向细胞沉淀中加入 3 毫升 100% 原液等渗密度梯度溶液。然后加入额外的 RPMI 10% FCS 培养基,使最终体积达到 10 毫升,并重悬细胞沉淀。反复倒置并充分混匀试管。随后,将一支含有 1 毫升 70% 原液等渗密度梯度溶液的血清移液管插入试管底部。
缓慢地将溶液铺在下层,注意不要产生气泡。将移液管从离心管中取出时,确保不扰动密度梯度。在4摄氏度下以800 g 离心30分钟,然后吸去上清液,包括髓鞘碎片层,直至离心管中剩余2至3毫升液体为止。
使用1毫升移液器收集30%和70%密度梯度之间的细胞层,并将其转移至一个新的15毫升离心管中。加入RPMI 10% FCS培养基,使最终体积达到15毫升,然后在4摄氏度下以450 g离心5分钟。
本文详细介绍了一种从小鼠脑组织中分离免疫细胞的方法。该过程包括对细胞外基质进行酶消化,随后通过密度梯度离心来分离不同类型的细胞。
从鼠脑组织中分离免疫细胞,可通过提供与疾病相关的功能研究体系,在神经免疫学靶点验证中实现机制性风险降低。该方法支持针对中枢神经系统调节类治疗药物的表型筛选和检测方法开发,提高早期发现阶段的预测可信度。该技术有助于免疫介导的神经系统疾病适应症的转化生物标志物匹配以及临床前模型的连续性。
该方法将免疫细胞分离视为神经免疫学研究项目中关键的早期发现步骤,可实现先导物的鉴定及临床前验证。
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
相关视频
0 观看次数
最后更新:22 八月 2026