制备小鼠脑组织中免疫细胞的单细胞悬液

0 次观看3:51 分钟 • July 8th, 2025

从一个包含神经细胞、非神经细胞和免疫细胞的小鼠脑组织开始,这些细胞位于脑的细胞外基质(ECM)中。

将组织切碎并重悬于培养基中。

将这些组织碎片转移至离心管中,并用胶原酶和DNase-I酶进行处理。

胶原酶消化细胞外基质(ECM),释放单个细胞,而脱氧核糖核酸酶-I(DNase-I)则降解游离DNA,防止细胞聚集。

然后,加入 EDTA 以灭活胶原酶。

加入培养基。离心并移除上清液。

向细胞沉淀中加入密度梯度溶液和培养基,形成低密度梯度层。

混合后,用高密度梯度溶液在下方铺垫该溶液,以建立密度差异。

低速离心以分离位于界面处的免疫细胞,较轻的细胞碎片位于上层,较重的神经元和胶质细胞位于底部。

移除上层,收集免疫细胞,并将其转移至另一支试管中。

离心并去除上清液,然后将细胞重悬于培养基中,形成单细胞悬液,用于后续实验。

将脑或脊髓组织连同培养基倒入100毫米的培养皿中,用镊子将组织移至底部。用无菌剃须刀片切碎脑组织,并将组织收集在培养皿底部。向培养皿中加入3毫升添加了10%胎牛血清(FCS)的RPMI培养基,然后使用10毫升移液管将组织在培养基中重悬,并转移至15毫升锥形管中。

向组织中加入 I 型胶原酶和 DNase I,将试管置于 37 摄氏度水浴中孵育 40 分钟。每 15 分钟颠倒混匀一次试管,以充分混合组织与酶。孵育后,向每管中加入 EDTA,使其终浓度为 0.01 摩尔,再将试管额外孵育 5 分钟,以灭活胶原酶。

向每根试管中加入9毫升添加了10% FCS的RPMI,然后在4摄氏度下以450 g离心5分钟。使用带有真空装置的巴斯德吸管吸取上清液,注意不要触碰细胞沉淀。

向细胞沉淀中加入 3 毫升 100% 原液等渗密度梯度溶液。然后加入额外的 RPMI 10% FCS 培养基,使最终体积达到 10 毫升,并重悬细胞沉淀。反复倒置并充分混匀试管。随后,将一支含有 1 毫升 70% 原液等渗密度梯度溶液的血清移液管插入试管底部。

缓慢地将溶液铺在下层,注意不要产生气泡。将移液管从离心管中取出时,确保不扰动密度梯度。在4摄氏度下以800 g 离心30分钟,然后吸去上清液,包括髓鞘碎片层,直至离心管中剩余2至3毫升液体为止。

使用1毫升移液器收集30%和70%密度梯度之间的细胞层,并将其转移至一个新的15毫升离心管中。加入RPMI 10% FCS培养基,使最终体积达到15毫升,然后在4摄氏度下以450 g离心5分钟。

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最后更新:22 八月 2026