使用工程慢病毒在神经元中分化人类多能干细胞

0 views • 3:21 min • July 8th, 2025

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转染试剂中用工程化慢病毒处理粘附的人多能干细胞。

该病毒携带抗生素耐药性和神经源性转录因子基因,由四环素反应和调节元件控制。

带正电荷的转染试剂可增强病毒融合及其内容物释放。

病毒 RNA 逆转录成 DNA 并整合到干细胞 DNA 中,从而能够表达产生激活蛋白的调节元件。

加入含有四环素衍生物的基础培养基,与激活蛋白形成复合物。

该复合物与四环素反应元件结合,促进基因表达并产生诱导干细胞分化为神经元的神经源性转录因子。

加入含有抗生素药物的基础培养基以消除未转染的细胞。

用含有蛋白水解酶的分离溶液处理细胞,这些酶可降解细胞外基质或ECM并释放细胞。

去除酶并将细胞重新接种到带有成熟培养基的 ECM 包被孔上,促进神经元成熟。

导分化前两天,加入1毫升细胞分离溶液分离ES细胞,室温孵育10分钟。将细胞转移到试管中。然后,用 2 毫升培养基清洗孔并将其添加到同一管中。将细胞以 300 倍 g 离心 5 分钟。然后,将沉淀重悬于培养基中,并将细胞以每孔 1 乘 10 的座密度接种到基质包被的六孔板上,直至第 5 个细胞。

第二天,将表达Ngn2的慢病毒加PuroR和四环素反式激活剂以及聚苯添加到新鲜的ES细胞维持培养基中。在第零天,在补充有N2且不含形态原的DMEM / F12培养基中加入每毫升2微克多西环素。在第一天,在新鲜的DMEM / F12加N2和多西环素中加入嘌呤霉素,至1微克/毫升的终浓度。

在嘌呤霉素中选择转导的细胞至少24小时。在第二天,用细胞分离溶液分离分化神经元,并将它们重新接种在涂有基质溶液的24孔板上。将它们维持在不含多西环素的NBA / B27培养基中。在涂有细胞外基质溶液的板上培养纯诱导神经元。

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Last updated: 18 July 2026