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从含有悬浮培养的人诱导性多能干细胞的低黏附多孔板开始,培养基为拟胚体(EB)培养基。
离心以沉淀细胞。孵育以促进细胞增殖和聚集,形成类胚体。
细胞谱系调控因子促进细胞向髓系祖细胞分化。
收集这些拟胚体并转移至包被有细胞外基质或ECM的培养板边缘。
更换为原始巨噬细胞前体(PMP)分化培养基,并轻轻振荡。孵育以促进胚胎体(EBs)附着于细胞外基质(ECM)。
更换一半培养基并继续培养。
造血生长因子驱动髓系前体细胞分化为原始巨噬细胞前体,这些细胞从拟胚体中分离并出现在培养基中。
收集这些 PMPs 并离心沉淀细胞。将细胞重悬于小胶质细胞分化培养基中。
将这些细胞接种于包被有层粘连蛋白的多孔板中,并进行培养。
PMP利用分化因子和营养物质,分化为类似小胶质细胞的脑免疫细胞。
接种细胞时,将100微升稀释后的细胞悬液加入低吸附圆底96孔板的每个孔中。以125 × g离心该板 g 3分钟,然后在37摄氏度和5%二氧化碳条件下培养4天。
第2天,使用多通道移液器,将旧的半量EB培养基更换为新鲜培养基。为了生成原始巨噬细胞前体(PMPs),在6孔板的各孔中加入1毫升冰冻的Matrigel包被溶液进行包被。随后,将培养板置于37摄氏度、5%二氧化碳环境中孵育2小时或过夜。
在EB分化第4天,使用1毫升移液器吸头将EB转移至包被有Matrigel的孔中。上下吹打以使EB从孔壁脱离。然后,将培养板倾斜放置,使EB沉降到孔的边缘。
待所有拟胚体沉降后,轻柔地用移液管吸除旧培养基,并沿孔壁加入3毫升新配制的PMP完全培养基,注意将拟胚体保留在孔边缘。通过手动左右及前后轻轻晃动培养板,使细胞在孔内均匀分布。随后将培养板置于培养箱中孵育七天,使拟胚体贴附于孔底。
七天后,在4倍放大倍数的明场显微镜下观察胚状体(EBs),确保其已贴附于孔板底部。进行半量换液,并在第21天将完全培养基更换为3毫升PMP完全培养基。
第28天,在上清液中观察呈圆形的细胞,即所谓的PMPs。随后,使用10毫升移液器和自动移液器收集含有PMPs的培养基,注意不要扰动拟胚体(EBs)。
将培养基中的PMP转移到15毫升锥形管中。在200 × g 条件下离心收集的PMP 4分钟,吸除上清液,然后用1至2毫升小胶质细胞样细胞或IMG基础培养基重悬。
然后,按照之前所述方法使用血细胞计数板对细胞进行计数。将剩余细胞离心,并将PMPs稀释至所需浓度。接着,用新配制的IMG完全培养基,将细胞以每平方厘米105个细胞的密度接种于经细胞培养处理的培养板中。