0 次观看 • 4:22 分钟 • July 8th, 2025
取一个含有小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)贴壁培养物的微孔板,其中含有培养基。
贴壁的MEFs作为饲养层,提供支持性的细胞培养微环境。
移除培养基,并在添加了可增强细胞存活小分子的 hiPSC 培养基中接种人诱导性多能干细胞(hiPSCs)。
孵育以使hiPSCs黏附于饲养层,该饲养层分泌促进hiPSC增殖的生长因子。
吸去培养基,加入酶溶液以解离细胞。收集细胞并离心,然后弃去上清液,将细胞重悬于hiPSC培养基中。
将细胞转移至包被有生物聚合物的培养板中。孵育以使小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)贴壁。
将悬浮的hiPSCs转移至V型底微孔板中。离心细胞并进行孵育,诱导细胞聚集体形成。
加入分化培养基进行补充。培养基中的营养成分以及细胞聚集体内的细胞间相互作用可促进hiPSC向神经前体细胞分化。
本实验方案首先需建立饲养层细胞。为建立该培养体系,将600,000个饲养层细胞接种至六孔板的每个孔中,每孔加入300毫升培养基。饲养层细胞培养48小时后,更换培养基,并在准备干细胞的同时继续孵育培养板1小时。
在37摄氏度水浴中解冻干细胞。解冻后,将细胞转移至15毫升锥形管中,并逐滴加入培养基至总体积5毫升。随后,轻柔离心细胞4分钟。吸除上清液,并将沉淀物轻柔重悬于1毫升含ROCK抑制剂的干细胞培养基中。
在定量细胞密度后,将300,000个干细胞接种到饲养细胞上。随后培养并扩增细胞,定期挑选状态良好的细胞。在扩增并冻存备用细胞后,将干细胞集落接种于标准培养板上继续培养,直至其汇合度达到50%至70%。
然后,使用温和的酶处理方法,并用1毫升移液枪头轻轻吹打,以收获HIPSCs用于神经前体细胞的分化。将细胞悬液轻轻离心,吸除上清液,将沉淀物重悬于5毫升人iPSC培养基中。随后,将细胞悬液转移至经0.1%明胶包被的5厘米细胞培养皿中,于37°C孵育1小时。
一小时后,将非贴壁细胞转移至15毫升离心管中。然后,用3毫升培养基轻轻冲洗培养板,并将冲洗液转移至同一离心管中。接着,再次进行轻柔离心,重复重悬步骤。
然后,测定细胞密度,并将细胞以每孔9,000个细胞的密度接种至96孔低黏附V型底板中。现在,将培养板离心3分钟,随后开始培养细胞。在接下来的14天内,每隔一天更换一半培养基,补充新鲜的分化培养基1。
本文概述了一种利用小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)作为饲养层将人诱导性多能干细胞(hiPSCs)分化为神经前体细胞的实验方案。该过程包括细胞培养、细胞脱离及孵育等多个步骤,以促进细胞聚集和分化。
将人诱导多能干细胞(hiPSCs)分化为神经前体细胞,可通过提供一种与人类相关且可扩展的通路研究系统,在早期神经科学靶点验证中实现机制层面的风险降低。该方法通过在生理相关背景下模拟神经发育机制,提高先导化合物筛选的预测可信度。该策略解决了发现阶段的一个关键转折点,即生物学相关性和检测可重复性对项目组合筛选决策的影响。
该方法通过提供一种可扩展的人源神经细胞系统用于机制性筛选和表型筛选,从而整合到从靶点验证到先导化合物发现的整个研究流程中。
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最后更新:22 八月 2026