肠系膜动脉收缩和舒张的研究，使用自动线Myography

本实验利用盐敏感型和盐抵抗型大鼠，比较肠系膜阻力动脉在苯肾上腺素张力作用下对细胞外钙的反应性。首先从动物体内分离肠系膜动脉弓，并解剖出阻力动脉分支。随后，将第一根不锈钢丝穿过一段已解剖的动脉短段，将血管悬挂于测功仪腔室中。

然后将第二根不锈钢丝平行穿入血管腔内，与第一根钢丝并列。接着，将安装好的血管拉伸至标准化的内周长。该操作步骤的最后一步是通过重复给予去氧肾上腺素刺激血管，再以累积浓度的钙进行舒张，从而重新激活血管功能。

最终，实验结果展示了血管张力的变化，这些变化可转换为钙反应曲线，并用于确定 EC 50 值。作为比较，我们最初产生使用该方法的想法，是在发现大鼠 Masonary 电池的 nev 网络表达了一种 gpro 铜钙敏受体时。

这可以以与苦味AIC受体相同的方式进行研究，后者由激动剂激活。通常，初次接触该方法的人员可能会遇到困难，因为血管的内皮层和平滑肌层较薄，血管容易受损。

如果发生这种情况，这些血管的机械性能可能会受到影响。首先，准备操作区域和手术器械。将麻醉后的动物仰卧放置，并用酒精擦拭腹部。

行正中剖腹术后，使用剪刀切除约85厘米长的肠段，包括肠系膜上动脉。近端在幽门附近切断，远端在回盲部交界处附近切断。将切除的肠段置于含有生理盐溶液（PSS）的涂覆培养皿中，并保存于室温。

将肠管近端固定于右侧，然后沿逆时针方向固定其余肠段。接着，游离包含第二和第三分支的肠系膜动脉节段及近端一段肠管。辨认肠系膜动脉的V形分支处，并将其与静脉分离。

使用镊子轻轻剥离脂肪组织和结缔组织，以避免直接接触动脉。开始固定血管时，截取两段长约两毫米的动脉。可使用一根长四厘米、直径40微米的无张力不锈钢钨丝的尖端来打开动脉的管腔。

然后使用精细镊子将导丝插入每条动脉的管腔内。注意避免损伤内皮，用37摄氏度的PSS填充肌动血管移植物腔室。用镊子将穿线的血管段转移至腔室内。

接下来，将切除的近端血管段转移至肌动描记仪腔室，并沿导线拉动末端，将其送入血管。避免拉伸血管。将导线近端逆时针固定在连接测微计的右侧钳口的近端固定螺钉下方。

用镊子夹住导线的自由端，并将其顺时针固定在右侧颚部远端的固定螺钉下，确保血管段沿导线位于两颚之间的间隙中，且不与颚部本身接触。将两颚旋开。将第二根导线与血管平行对齐，并将其插入血管腔的远端。

轻柔地将导丝沿血管段管腔一次性穿过，以已固定的导丝作为引导。手持导丝位置距离血管约1厘米，以避免操作过程中牵拉血管，并避免接触内皮。拧紧夹具，确保第二根固定导丝从右侧已固定的导丝下方穿过。

将第二根金属丝的近端在连接到换能器的左手侧钳口的近端固定螺钉下顺时针方向固定。将金属丝的远端固定在左手侧钳口的固定螺钉下并拧紧，以拉伸金属丝。安装完成后，在37°C条件下平衡30分钟。

平衡后，从安装菜单中重置马达，并启动标准化程序，该程序将血管拉伸至标准化的内周长。首先打开标准化菜单，将目标跨壁压设置为13.3千帕。接下来，将每个标准化步骤的持续时间设置为60秒。

IC1 与 IC100 的比值应等于 0.9，IP 校准应设置为二星三角形。当显微镜目镜中的十字线对准血管段的远端和神经端时，通过目镜读数测量已安装的肠系膜动脉的长度。标准化后，通过执行一系列刺激和洗脱周期的标准启动程序重新激活血管。

首先，盖上肌槽盖，用95%空气和5%二氧化碳开始通气。向槽内加入含有100微摩尔抗坏血酸的新鲜PSS溶液。用5微摩尔的细辛、肾上腺素或PE收缩血管5分钟，然后用PSS缓冲液冲洗4次。最后一次冲洗后，重新向槽内加入PSS，等待3分钟，再次补充PSS并用PE进行收缩。如前所述，此时动脉已准备好进行实验。

通过逐步累积添加浓度递增的氯化钙，测量收缩血管的舒张反应。该表格显示，应用去氧肾上腺素后，Wistar大鼠、DS（Doll盐敏感型）大鼠与DR（Doll盐抵抗型）大鼠的血管基础张力存在差异。来自Wistar大鼠的这条记录显示，通过逐步添加氯化钙，可引起去氧肾上腺素收缩的动脉发生舒张，而DS大鼠组织中的这种钙诱导舒张反应严重受损，与Wistar大鼠及DR大鼠相比明显减弱。如图所示，钙敏感性的差异可通过钙反应曲线体现，且在计算EC50值时再次得到证实。

最后，与Dr.Rats Once mastered相比，DS大鼠动脉中钙敏感受体的表达减少。如果操作得当，该技术可在两小时内完成。观看本视频后，您应能充分理解如何在等长条件下比较小肠系膜动脉对外源性化合物的血管反应性。